文献分享:采用多种分析手段对SARS-CoV-2重组蛋白疫苗进行基于高分辨质谱的全面深入表征
原创 飞飞 赛默飞色谱与质谱中国
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张晓夕
前言
引起COVID-19全球大流行的SARS-CoV-2病毒对公共卫生构成了重大威胁,需要采取有效措施对其进行治疗和预防。疫苗接种一直是传染病预防的重要环节之一,其中常见的一种为重组蛋白疫苗,其生产工艺可简要表述如下:通过基因工程的手段将能表达病毒表面抗原的基因序列转入原核或真核生物细胞系中,使其能大批量表达抗原蛋白,再将表达的抗原蛋白提取纯化,用于预防接种。其最大的优点在于,经改造过的重组抗原蛋白具有极强的免疫原性,并且生产工艺目前也已经比较成熟。但在质量控制方面,重组蛋白疫苗具有多种翻译后修饰,且高级结构复杂,故重组蛋白疫苗产品的理化性质表征颇具挑战性。
本文中展示了中检院单抗室最新发表在Analytica Chimica Acta杂志(IF=6.2)上,对SARS-CoV-2重组蛋白疫苗进行全面深入表征的研究结果。该产品包含多种翻译后修饰,如糖基化、脱酰胺和氧化等,异质性极高,单一技术平台无法实现对此类重组蛋白产品彻底、准确的表征,故整合多种理化分析技术进行产品表征就显得尤为必要。本文中展示了整合多种分离技术的创新串联高分辨质谱工作流程,包括超高效液相色谱(Ultra High Performance Liquid Chromatography, UHPLC)、离子交换色谱(Ion Exchange Chromatography, IEX) 和成像等电聚焦毛细管电泳 (Imaged Capillary Isoelectric Focusing, icIEF)分别与高分辨质谱联用,首次对该SARS-CoV-2 重组蛋白疫苗进行了全面、深入的表征。
本工作的一个突出亮点在于尖端 icIEF-MS 在线直联和 icIEF馏分收集技术对于揭示SARS-CoV-2重组疫苗电荷异质性的重要性。
实验流程及方法
本文的实验流程如图1所示。由于所研究的SARS-CoV-2重组疫苗是一个高度糖基化的蛋白,具有多个N/O糖基化位点,所以除了非变性质谱、肽图分析和N/O糖链分析等传统的LC-MS蛋白质表征技术之外,研究人员又选用了基于电荷异质性对蛋白进行分离的技术,如强阳离子交换色谱(Strong Cation Ion Exchange Chromatography, SCX)和成像等电聚焦毛细管电泳 (icIEF)技术分别与高分辨质谱在线联用,并对iCIEF分离后的峰分组进行馏分收集,随后进行SCX-MS分析。
图1. 实验整体流程
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结果与讨论
本文中分析的SARS-CoV-2重组蛋白疫苗系CHO细胞系表达,由三段重复的单体序列组成,每段单体序列包括219个氨基酸,具有2个N-糖基化位点和2个潜在的O-糖基化位点,故完整蛋白分子总长657个氨基酸,具有6个N-糖基化位点和6个潜在的O-糖基化位点。除此之外,该蛋白还包括常见的脱酰胺和氧化等翻译后修饰,异质性极高,给理化分析带来了极大挑战。
研究人员首先对样品进行了还原/非还原条件下胰酶酶解,并分别使用Thermo Scientific™ Q Exactive™ Plus Orbitrap™ 超高分辨质谱仪和Orbitrap Fusion™ Lumos™ Tribrid™ 超高分辨质谱仪进行了液质联用肽图分析。使用Q Exactive™ Plus Orbitrap™ 超高分辨质谱仪的高能碰撞解离(High Energy Collision Dissociation, HCD)二级碎裂模式,由于HCD模式下糖链也会被打碎,对于没有切除N/O糖链的样品,肽图分析可达到89.5%的序列覆盖度。而使用Lumos™ Tribrid™ 超高分辨质谱仪的HCD二级碎裂触发电子转移/ 高能碰撞解离(Electron-Transfer/Higher-Energy Collision Dissociation, EThcD)二级碎裂模式,可以监控糖肽HCD碎裂后产生的糖链特征性碎片离子,随之对同一条糖肽进行EThcD二级碎裂,保留肽段上的完整糖链修饰,从而可以在肽图分析层面同时对糖肽序列、糖基化修饰位点和糖链分子量进行鉴定。
图2A和2B分别展示了EThcD二级碎裂得到的O-糖肽及高唾液酸化N-糖肽的二级谱图,证明了EThcD碎裂模式在糖肽分析中的独特优势。图2C展示了采用EThcD二级碎裂,鉴定到的N-糖基化位点及糖型分布情况,表1则对EThcD二级碎裂肽图层面鉴定到的O-糖糖链种类和相对含量与传统的液质联用检测荧光标记的O-糖链(UHPLC-FLD-MS)结果进行了对比,可见两种方法分别鉴定到的O-糖型趋势一致,但EThcD二级碎裂肽图分析可以在一针进样中同时获得糖基化修饰位点和糖型信息,糖型种类更为丰富,还可以获得未发生糖基化修饰的比例,这些都是质谱法相对于传统荧光标记法检测O糖链的独特优势。对于没有切除N/O糖链的样品,EThcD二级碎裂肽图分析可达到97.7%的序列覆盖度,仅切除N-糖链后,序列覆盖度可达99.7%,并且可以确定每段单体序列上分别有2个N-糖基化修饰位点和1个O-糖基化修饰位点,完整蛋白上总共有6个N-糖基化修饰位点和3个O-糖基化修饰位点。
图2A.肽段VQPTESIVR的EThcD MS2谱图, T5发生了O-糖基化修饰,糖型为GalNAc-3SG.
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图2B.肽段FPNITNLCPFGEVFNATR 的EThcD MS2谱图, N25发生了N-糖基化修饰,糖型为FA2G2S2.
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图2C. 采用EThcD二级碎裂,鉴定到的N-糖基化位点及糖型分布情况(点击查看大图)
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表1. EThcD 肽图分析与传统荧光标记法检测O糖链定性定量结果对比。左栏,EThcD 肽图分析法。右栏,传统荧光标记法。
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肽图分析结果初步揭示了N/O糖基化修饰导致的分子高度异质性。接下来,研究人员通过使用不同的糖苷酶,切除对应种类的糖链后,在Q Exactive Plus 质谱仪上进行非变性条件下完整蛋白分子量分析。非变性条件可减少蛋白电荷态,进而降低相邻质谱峰之间的互相干扰,从而获得更准确的分子量分析结果,但此技术对于质谱仪的灵敏度有较高要求。图3A-F展示了分别使用不同种类糖苷酶处理样品后,非变性条件完整蛋白分子量分析的结果。Orbitrap质谱平台兼具高灵敏度、高质量精度和高分辨率的优点为此类复杂样品的非变性条件下完整蛋白分子量分析提供高质量分析结果。由于样品中具有多个糖基化位点,将完整蛋白分子量分析与肽图结果相结合,可以得到蛋白上不同位点的糖链修饰分布情况。图3G展示了3个O-糖基化位点上不同糖型修饰的分布情况,可见排名前三位的组合依次为2xGalNAc-3SG + 1xGalNAc-6S-3SG (39.05%),3xGalNAc-3SG(28.52%)和1xGalNAc-3SG+2xGalNAc-6S-3SG (19.86%)。
图 3A. 使用PNGaseF糖苷酶切除N-糖链后非变性质谱谱图,分辨率 70,000.
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图 3B. 使用PNGaseF糖苷酶切除N-糖链后非变性质谱谱图解卷积结果,表格中列出了相对含量大于20%的O-糖链类型。
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图 3C. 使用α2-3,6,8 neuraminidase糖苷酶切除唾液酸后非变性质谱谱图,分辨率 70,000.
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图 3D. 使用α2-3,6,8 neuraminidase糖苷酶切除唾液酸后非变性质谱谱图解卷积结果,表格中列出了相对含量前五位的O-糖链类型(点击查看大图)
图 3E. 使用PNGaseF糖苷酶和α2-3,6,8 neuraminidase糖苷酶依次切除N-糖链与唾液酸后非变性质谱谱图,分辨率 70,000(点击查看大图)
图 3F. PNGaseF糖苷酶和α2-3,6,8 neuraminidase糖苷酶依次切除N-糖链与唾液酸后非变性质谱谱图解卷积结果 。
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图3G, 不同分析方法对O-糖链定性定量结果。Intact level, 非变性质谱法。peptide mapping level, EThcD肽图法。released glycan level,荧光标记法。
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复杂的糖基化修饰导致此样品具有极高的电荷异质性。研究人员使用了尖端的iCIEF-MS直联技术,对该样品进行基于电荷异质性的分离,随后在线直联高分辨质谱测定每个电荷异构体的分子量。如图4A-B所示,没有切除糖链的样品经iCIEF分离后得到18个峰,每个峰中仍含有多个不同组分。图4C对peak1和peak2的原始谱图进行了对比,可见明显区别,图4D的解卷积结果对比进一步揭示了peak1和peak2的不同。得益于iCIEF技术对复杂样品的分离,以及Orbitrap超高分辨质谱平台的优异性能,不切除糖链即可对复杂糖蛋白进行完整分子量分析,从而得到详实且最接近样品原始状态的N/O糖基化修饰信息。
图4A, 未切除糖链样品的icIEF-UV分离谱图。
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图4B, 图4A对应的icIEF-MS直联质谱总离子流图。
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图4C,peak1 和 peak2的一级质谱谱图.
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图4D,peak1 和 peak2的解卷积结果。表中列出了每个峰中相对含量排名前五的组分。
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本实验中所使用的CEInfinite iCIEF 系统(Advanced Electrophoresis Solutions Ltd., AES)不仅可以和质谱在线联用,还可以将iCIEF分离后的峰进行馏分收集,随后可用于多种生物学表征/理化分析。研究人员使用该功能,对SARS-CoV-2重组蛋白疫苗经iCIEF分离后的峰按pI值分为五组并进行馏分收集。图5展示了使用馏分收集情况以及使用SCX-MS对五个馏分进行分析的结果,可见其结果与iCIEF-MS直联结果具有一致性,且iCIEF与SCX两种基于电荷异质性的技术联合使用,可发挥其互补优势,获得更详实的电荷异质体信息。
图5. icIEF离线收集馏分过程及每个馏分SCX-MS一级质谱图。(点击查看大图)
图5E, 图5D中五个馏分解卷积结果。与icIEF-MS在线直联结果对应关系均已在图中标明。
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结 论
本文的研究中整合了多种分离分析技术,构建的蛋白质表征工作流程强调了基于 MS 技术的综合平台的突出重要性,以及创新型 icIEF-MS 和制备型 icIEF 在 SARS-CoV-2 重组疫苗和类似复杂蛋白药物开发中的重要贡献。
原文参考链接:
https://doi.org/10.1016/j.aca.2024.342349
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