德国ibidi的ibiPore可以实时观察流动、剪切情况下的细胞侵袭、迁移、细胞相互作用等实验。
对实验结果进行观察统计时,不需要将膜取下,也不需要将另一边的细胞擦掉(经常将膜擦破,导致实验失败),可直接将μ-Slide放于显微镜下观察统计。
细胞可以通过两种方式,选择贴壁于氮化硅膜的上下两侧。
可以把细胞种植在膜下边,避免自由落体的说法,大大提高了实验的准确性。
21世纪注定是一个生命科学的世纪,科研工作者们如果想在这个世纪去决胜,能做到一点,不仅要好的idea,领先的技术,更需要得心应手的好工具。
所谓工欲善其事必先利其器,今天为大家介绍德国ibidi的μ-Slide ibipore SiN (图1), 一款具有多孔氮化硅膜的μ-Slide载玻片,可用于实时观察流动、剪切力条件下的细胞侵袭、迁移以及细胞相互作用的可视化的“ transwell ”,更多应用请参阅文中(Intended Use的相关内容)。
图1. ibipore及ibipore SiN氮化硅膜培养细胞的染色结果。
图片背景为在ibipore氮化硅膜上培养细胞的荧光染色结果,规则排布的白色圆点为氮化硅膜的孔隙
ibipore有上下两个独立的通道(见图2),两个通道 overlap 的区域由一个孔径大小均一的氮化硅膜隔离开(见图3)。两个通道可以分别培养细胞,通过两种方式,细胞可以贴壁于氮化硅膜的上下两侧。
在细胞侵袭实验中,普通的transwell只能将细胞培养在上侧,这样所得到的实验结果并不能明确的说明是由于重力作用还是侵袭能力本身造成的。而ibipore考虑到这一因素,建议实验者在氮化硅膜的下侧进行细胞培养,检测细胞向上侧通道进行迁移的能力,进而巧妙的排除了重力作用对侵袭实验的影响。
配合ibidi流体剪切力系统以及加热孵育系统,可以在流动、剪切力条件下实时的观察细胞的侵袭以及迁移等实验。德国ibidi公司为满足不同实验的需求设计了不同孔径的氮化硅膜(见图4)。
ibipore与传统的transwell实验最大区别有三点:
①. ibipore可以在上下两个通道中培养细胞,这样可以观察细胞向上的侵袭情况,排除以往实验中重力作用的影响;
②. ibipore中间的氮化硅膜具有良好的光学特性,可以实时成像观察侵袭情况,也可以进行免疫荧光染色实验;
③. ibipore可以配合ibidi流体剪切力系统,观察淋巴细胞等在流动状态下的侵袭情况。
ibipore产品特点:
* 透过薄而多孔的薄膜获得卓越的光学性能
* 有着广泛的应用,细胞可完全粘附到顶部-基底
* 对于不同细胞类型有多种孔径大小可以选择
应用:
1.流动状态下跨内皮细胞迁移
2.2D或3D凝胶内细胞层的共培养和传输分析
3.顶部-基底细胞极性分析
4.顶部-基底梯度的细胞屏障模型分析
5.细胞迁移分析(例如,用于研究肿瘤侵袭或转移)
在μ-Slide ibiPore IV型胶原涂层3μm孔径中人类内皮细胞的免疫荧光染色,相位对比度、DAPI(蓝色)、VE钙粘蛋白(绿色)和F肌动蛋白(红色)的叠加图像。
技术特点:
1.SiMPore的微孔氮化硅膜
2.中间具有多孔光学膜的跨通道结构
3.优异的光学性能,堪比盖玻片
4.孔径大小0.5μm,3μm,5μm,8μm供选择
5.中间膜0.4µm(400 nm)
6.使用工作距离>0.5mm的物镜
7.与ibidi泵系统(流体剪切力系统)完全兼容
8.下部通道中明确的剪切力和剪切速率范围
µ-Slide ibiPore SiN工作原理
µ-Slide ibiPore SiN由插入两个通道之间的水平多孔膜组成。上部通道是膜上方的静态储液池。下部通道是灌注通道,用于对附着在膜上的细胞施加限定的剪切应力。上部通道和下部通道仅通过隔膜彼此连通。
图2. ibipore组成示意图
多孔膜由氮化硅(SiN)制成,这种材料具有非常高的化学和机械稳健性。400nm厚的氮化硅膜非常适合成像和显微镜观察,没有任何自发荧光或透明度问题(如玻璃)。SiN材料可以直接用于贴壁细胞培养,也可以选择用ECM蛋白包被。
应用建议:孔径 & 孔密度
什么是孔密度
孔密度是指膜的空隙体积分数。是孔隙的体积除以膜的总体积。下面的图形为采用相同的放大倍数。
图3. 不同孔径的氮化硅膜
不同应用的建议孔径:不同的细胞大小和直径不同,根据具体实验请选择不同孔径
图 4. 为不同应用推荐的不同孔径的氮化硅膜
这些应用已由ibidi研发团队或者我们的用户进行过试验。
Endothelial Barrier Assays内皮屏障分析
在膜一侧培养单层细胞。细胞可以在静止或者流动剪切力条件下培养。
Co-Culture and Cell Barrier Assay共培养和细胞屏障分析
在膜的两侧分别培养单层细胞。通过这种方法可以进行信号传递、共培养以及迁移实验(例如,分析药物通过上皮或内皮屏障的传递)。
Apical-Basal Cell Polarity Assays顶端-?基底端细胞极性分析
3D凝胶基质中的化学因子可以导向在膜另一侧培养的单层细胞的极性发生。
以下示例将讲述该产品进一步的潜在应用。ibidi仍需在内部测试这些应用,因此我们无法提供特定的实验方案。但是,从技术角度来看,这些应用应该是可行的。
Trans-Membrane Migration in 2D/2D跨膜迁移
在膜的一侧培养单层细胞。可以观察悬浮的白细胞在流动状态下的滚动、粘附以及侵袭情况。
Cell Transport in a 3D Gel Matrix细胞在3D凝胶基质中的传递
3D凝胶基质中的细胞迁移:在流动状态下,观察白细胞的滚动、粘附以及向3D凝胶基质中肿瘤细胞方向的迁移情况。
MDCK和NIH-3T3细胞的相差显微镜观察
Madin-Darby犬肾(MDCK,左)和NIH-3T3(右)细胞在μ-Slide ibiPore SiN,孔径0.5μm的玻片中,无蛋白质包被。接种后,将细胞在静态条件下在培养箱中保持20小时。相差显微镜,4倍物镜。请注意,这张图像中的中心多孔区域看起来更暗,因为0.5μm的孔隙无法用低分辨率物镜分辨。
流动条件下HUVECS的相差显微观察
人脐静脉上皮细胞(HUVEC)在μ-Slide ibiPore SiN中,孔径3μm的玻片中,有纤连蛋白包被。将细胞接种并在具有ibidi泵系统/流体剪切力系统的流动条件(10达因/cm2)下在培养箱中保持12小时。固定后的相位对比显微镜,10倍物镜。
流动下HUVECs F肌动蛋白细胞骨架的荧光显微镜观察
人脐静脉上皮细胞(HUVEC)在μ-Slide ibiPore SiN,孔径5μm玻片中的免疫荧光染色,有纤连蛋白包被。将细胞接种并在具有ibidi泵系统/流体剪切力系统的流动条件(10达因/cm2)下在培养箱中保持12小时。绿色:肌动蛋白(鬼笔肽),蓝色:细胞核(DAPI)。荧光显微镜,20倍物镜。
选择指南:ibidi跨膜分析实验解决方案
参考文献:
Salvermoser, Melanie, et al. "Myosin 1f is specifically required for neutrophil migration in 3D environments during acute inflammation." Blood, The Journal of the American Society of Hematology 131.17 (2018): 1887-1898. 10.1182/blood-2017-10-811851
Rohwedder, Ina, et al. "Src family kinase-mediated vesicle trafficking is critical for neutrophil basement membrane penetration." Haematologica (2019). 10.3324/haematol.2019.225722
Non-Recommended Applications不建议的应用
因技术原因,本产品不适用于以下应用,应避免使用.
本产品不适用于:
1.上通道灌流
2.两个通道的灌流
3.跨膜流动
4.筛选应用
订购信息
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