型号: | SG-LP011 |
产地: | 河南 |
品牌: | |
评分: |
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Langendorff离体心脏灌流是将离体动物心脏在恒温恒压条件下,将心脏套管插入主动脉,逆行灌流含氧的(KH液),由冠状动脉灌流心肌,灌流液经冠状静脉窦从右心房、肺动脉端流出,以维持离体心脏在外界正常的生理活动。Langendorff离体心脏灌流系统是研究离体心脏电生理活动最常用的一种技术,与在体心脏研究相比,它不受神经、体液的调节,影响因素少,而且可控性强(如前负荷、后负荷、营养液成分、温度等均可调节)。因此,离体心脏模型广泛运用于医学各领域生理、药理、生化等基础与临床相关科室的研究领域。
Langendorff离体心脏灌流系统(恒流)
Langendorff离体心脏灌流系统通过控制温度及流速,改变刺激或改变控制因素研究离体心脏的电生理活动的变化。它由温控系统、灌流系统、供氧装置三部分组成,确保离体心脏正常的生理活动。
Langendorff离体心脏灌流系统配件展示
技术指标:
1. 此为恒流灌流。
2. 温控范围:室温~100℃。
3. 控温精度:±0.5℃。
4. 水槽尺寸:390×330×180 mm。
5. 灌流罐尺寸:200 mL/500 mL。
6. 回流罐尺寸:100 mL/200 mL。
7. 流量:0.02 ~ 380 mL/min。
8. 转速范围:0.1~100 rpm(正反可调)。
9. 转速分辨率:0.1 rpm。
10. 蠕动泵尺寸:232×142×149 mm。
11. 工作环境:温度0~40℃,相对湿度<80%。
12. 防护等级:IP31。
Langendorff离体心脏灌流系统适用动物:小鼠,大鼠,豚鼠,兔子等。
实验动物 | 灌流速度 |
小鼠 | 2~4 mL / min |
大鼠 | 8~10 mL / min |
豚鼠 | 6~8 mL / min |
兔子 | 30 mL / min左右 |
…… |
实验步骤:
1、配制KH液(1 L):使用前,提前充氧(95% O2 +5% CO2 )饱和。取80 mL KH 液于-20℃预冷(取心脏时使用,冰水混合物最佳)。
试剂名称 | C(mM) | MW (g.mol -1 ) | g/L |
NaCl | 119 | 58.44 | 6.9544 |
NaHCO3 | 25 | 84.01 | 2.1003 |
KCl | 4 | 74.55 | 0.2982 |
KH2PO4 | 1.2 | 136.08 | 0.1633 |
MgCl2 | 1 | 95.2 | 0.0952 |
CaCl2 | 1.8 | 146.98 | 0.2646 |
D-glucose | 10 | 180.16 | 1.8016 |
2、实验准备:
(1)系统使用前的清洗:打开水浴锅,先用烧开的去离子水冲洗系统,再用未加热去离子水冲洗系统,使系统保持洁净,并调节到相应的灌流速度(注:大小鼠,豚鼠等选择相应的灌流速度。记录流速、泵速值和出液口流速值。记录三次取平均值。)水浴锅内的水需每两个月更换一次。
(2)给 KH 液充氧饱和。排出灌流系统内空气,使灌流液充满整个管路;分别记录水浴锅、灌流罐KH液、出液口的温度(温度测三次取平均值,若有一次测量温度误差大于1℃,则弃之重测)以及周围环境的温度。(注:开始充氧到挂心脏 30~40 min)。
(3)打开循环水加热系统,调节循环水温度,使流出的循环水温度为 37 ℃(注:每次温度测定 3 遍,取平均温度,分别测量环境温度,水浴锅,灌流罐KH液和出液口的温度)。
3、配制所用药物:
给动物注射肝素钠(生理盐水配制终浓度 1000 U/ml):小鼠 100 U/20 g;豚鼠、大鼠 3125 U/kg。
4、灌流心脏:
将动物固定于实验平台,注射麻药,处死动物取其心脏,后将心脏主动脉连接到主动脉插管上,并用手术缝合线系紧。打开调试好的灌流系统开始灌流,进行后续实验。
5、仪器清洗:
实验完毕后,排干灌流系统内的KH液,并清洗管路。
国内已采购客户:
陆军总医院、河北医科大、河南大学、大连大学、江苏省人民医院、军科院、江苏省中医药、江西南昌二附院等。
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