使用离心机进行外泌体(Exosome)分离纯化的标准方法

2023/03/14   下载量: 0

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应用领域 医疗/卫生
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参考标准 ——

目前外泌体研究是非常热门的课题,主要原因是外泌体在细胞内的信号传导中起到了重要的作用, 故外泌体可以用于预诊断,治疗,及作为生物标记物。外泌体是细胞衍生的膜泡,其由脂质双层形成,从细胞分泌出来,大小在20-200nm 之间,呈现于唾液,血液,尿,羊水,等体液内。本文将介绍使用离心机进行分离纯化的标准方法

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目前外泌体研究是非常热门的课题,主要原因是外泌体在细胞内的信号传导中起到 了重要的作用, 故外泌体可以用于预诊断,治疗,及作为生物标记物。外泌体是细胞衍 生的膜泡,其由脂质双层形成,从细胞分泌出来,大小在20-200nm 之间,呈现于唾液, 血液,尿,羊水,等体液内。本文将介绍使用离心机进行分离纯化的标准方法:

1. 首先使用差分离心进行粗纯化,步骤如下:

1). 收集细胞上清液或体液,在低离心力下进行离心 (300-500xg), 离心约 10 分钟,除去细胞沉淀,将上清转到另一个离心管中

2). 增加离心力,2000-5000xg, 离心 10 分钟,进一步除去细胞沉淀,收取上清 到新的离心管

3). 增加离心力,在 10000xg 下将前面收集的上清进行离心,约 1 小时,收取沉 淀,则为粗纯化的外泌体 

上述步骤可使用米立特高速冷冻离心机  及不同容量的转头进行离心 

2. 密度梯度离心进行外泌体的进一步纯化: 将上述粗纯化的外泌体加入碘克沙醇(iodixanol)进行进一步纯化。步骤如下:

步骤 1:使用碘克沙醇进行密度梯度离心来纯化外泌体

步骤 2 分馏收集溶液并进行密度测试: 离心分离后, 每 2ml 溶液进行分布收集成 17 个样品管, 并对每管溶液进行屈光计检测. 根据每管溶液的屈光值进行密度计算.

步骤 3. 确定含有外泌体的收集管: 外泌体应该存在于密度在 115-119g/cm3 的收集管,所以大概可以确定收集管#12 和 13 是纯化的外泌体。 

步骤 4 清洗外泌体并保存: 使用 PBS 清洗外泌体并保存在 4℃。

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