| 供货周期： | 一周 |
| 品牌： | 博尔森 |
| 规格： | 100T/48S |
| 货号： | BES-2646BTK |
| CAS号： |
海藻糖合成酶（TS）活性检测试剂盒说明书
微量法
规格：100T/48S
产品组成：使用前请认真核对试剂体积与瓶内体积是否一致
溶液的配制：
1、 试剂二：临用前取一瓶先加入 6mL 蒸馏水，震荡使其充分溶解（若溶解后的试剂中有黑色颗粒物，可离
心后取上清使用），用不完的试剂 2-8℃保存 2 周。
2、 工作液的配制：临用前将试剂三和试剂四 1:1 等体积混合，根据样本实际所需用量现配现用。
3、 标准品：临用前加入 1 mL 蒸馏水配制成 50 μmol/mL 的麦芽糖标准溶液，用不完的试剂 2-8℃保存 2 周。
产品说明：
然后用蒸馏水八倍稀释成 6.25 μmol/mL 的麦芽糖标准溶液（建议吸取 25 μL 50μmol/mL 麦芽糖标准溶液，加入 175 μL 蒸馏水中，充分混匀）待测，现用现配。
海藻糖是功能性低聚糖，具有非还原性、保湿性、热酸稳定性、抗冻结性等特性，是细胞在不良环境条件下产生的一种重要的抗逆应激物之一，它对生物大分子和生物组织有着非特异性的保护作用。
海藻糖合成酶（Trehalose Synthase，TS）能催化麦芽糖生成海藻糖，是海藻糖生物合成的关键途径之一。本试剂盒使用糖化酶分解剩余麦芽糖为葡萄糖，通过葡萄糖氧化酶法测定葡萄糖含量，按照麦芽糖减少的量表示海藻糖合成酶的活性。
注意：实验之前建议选择 2-3 个预期差异大的样本做预实验。如果样本吸光值不在测量范围内建议稀释或者增加样本量进行检测。
需自备的仪器和用品：
可见分光光度计/酶标仪、微量玻璃比色皿/96孔板、低温离心机、恒温水浴锅、可调式移液枪、研钵/匀浆器、蒸馏水。
操作步骤：
一、样本处理（可适当调整待测样本量，具体比例可以参考文献）
细菌或培养细胞：先收集细菌或细胞到离心管内，离心后弃上清；按照每500万细菌或细胞加入1 mL提取液，超声波破碎细胞（功率200W，超声3s，间隔9s，重复30次）；然后8000 g，4℃，离心10 min，取上清（若上清不够澄清，建议重复上述离心步骤），置于冰上待检。
组织：按照组织质量（g）: 提取液体积（mL）为1 : 5~10的比例（建议称取约0.1 g组织，加入1 mL提取液），进行冰浴匀浆。8000 g，4℃，离心10 min，取上清（若上清不够澄清，建议重复上述离心步骤，置于冰上待检。
二、测定步骤
1、 分光光度计/酶标仪预热30 min以上，调节波长至505 nm，蒸馏水调零。
2、 操作表：
（1）酶促反应（在EP管中进行以下操作）：
三、酶活性计算
1、按样本蛋白浓度计算：
单位的定义：每mg组织蛋白每分钟催化1 nmol 麦芽糖生成1 nmol 海藻糖定义为一个酶活力单位。
TS酶活（U/mg prot）= C标×ΔA测定÷ΔA标准×V样÷（V样×Cpr）÷T×F×1000÷2
=26.041×ΔA测定÷ΔA标准÷Cpr×F
2、按样本质量计算：
单位的定义：每g组织每分钟催化1 nmol 麦芽糖生成1 nmol 海藻糖定义为一个酶活力单位。
TS酶活（U/g 质量）= C标×ΔA测定÷ΔA标准×V样÷（V样÷V样总×W）÷T×F×1000÷2
=26.041×ΔA测定÷ΔA标准÷W×F
3、按细菌或细胞数量计算：
单位的定义：每104个细菌或细胞每分钟催化1 nmol 麦芽糖生成1 nmol 海藻糖定义为一个酶活力单位。
TS酶活（U/104 cell）= C标×ΔA测定÷ΔA标准×V样÷（V样÷V样总×cell）÷T×F×1000÷2
=26.041×ΔA测定÷ΔA标准÷cell×F
C标：标准管浓度，6.25 μmol/mL；V样总：加入提取液体积，1 mL；V样：加入样本体积，0.05 mL；T：反应时间，120 min；Cpr：样本蛋白质浓度，mg/mL；W：样本质量，g；cell：细胞或细菌总数，以万计；F：稀释倍数；1000：单位换算系数，1 μmol=1000 nmol；2：1分子麦芽糖可转化为2分子葡萄糖。
注意事项：
1、 当吸光值大于 1.5 或者 ΔA 测定大于 1 时，建议将样本稀释后测量。计算公式注意乘以稀释倍数。
实验实例：
1、 取 0.1 g 小鼠肝脏加入 1 mL 提取液进行匀浆研磨，取上清用蒸馏水稀释 2 倍后按照测定步骤操作，用 96 孔板测定后计算 ΔA 测定=A 对照-A 测定=1.177-0.536=0.641、ΔA 标准=A 标准-A 空白=1.031-0.049=0.982，按样本质量计算酶活得：
TS酶活（U/g 质量）= 26.041×ΔA测定÷ΔA标准÷W×F=339.965 U/g 质量。
2、 取 0.1 g 海带加入 1 mL 提取液进行匀浆研磨，取上清按照测定步骤操作，用 96 孔板测定后计算 ΔA 测定=A对照-A 测定=1.366-0.793=0.573、ΔA 标准=A 标准-A 空白=1.031-0.049=0.982，按样本质量计算酶活得：
TS 酶活（U/g 质量）= 26.041×ΔA 测定÷ΔA 标准÷W×F=151.950 U/g 质量。
特别提示：本公司的所有产品仅可用于科研实验，严禁用于临床医疗及其他非科研用途！
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