水下荧光测油仪

仪器简介：特纳 水下荧光测油仪 C7F 可与多参数装置集成到一起进行使用，具有高精度、低价格和体积小等特点技术参数：水中油 0.1ppm主要特点：Cyclops-7荧光仪特点体积高度集成可作为传感器方便的安装到多参数装置上比传统的荧光仪耗能较低； 300 mW实时模拟信号输出优越的性价比.

美国TurnerDesigner公司——Cyclops-7F 水下荧光仪产品介绍Cyclops-7F 水下荧光仪具有高精度、低价格和体积小等特点，使得它在海洋、淡水及染料示踪等方面具有广泛的应用价值。尽管体积小巧，但它的灵敏度及动态监测范围并未受到影响。它可避免浊度的干扰，保证了在多种环境条件下都具有很好的监测效果。跟据光学滤片不同 Cyclops-7F 荧光仪可测定多种荧光物质，包括叶绿素 a、若丹明 WT、荧光素、浊度、藻蓝蛋白和藻红蛋白。Cyclops-7F 需要一个外置电源，可对外接的显示记录仪进行 0~5V 的标准输出。三种设置功能提供了较宽的测量范围，对于叶绿素为 0.03~500 μg/L，对蓝绿藻为 150~2 万个细胞/mL，对若丹明 WT 为 0.04~1000 ppb。 ◇提供固体标定块可用来简单快速的校准 Cyclops-7F 传感器。技术参数线性：0.99R2应用最小检出限线性范围活体叶绿素0.025 μg/L0-500 μg/L蓝绿藻150 cells/m0-150,000 cells/mLCDOM0.15 ppb（硫酸奎宁）0.5 ppb（焦油脑四磺酸钠）0-1250 ppb（硫酸奎宁）0-5000 ppb（焦油脑四磺酸钠）水中原油0.2 ppb（焦油脑四磺酸钠）0-2700 ppb（焦油脑四磺酸钠）水中精炼油2 ppb（1,5-萘二磺酸二钠盐）0-10,000 ppb（1,5-萘二磺酸二钠盐）荧光增白剂0.6 ppb（硫酸奎宁）0-15,000 ppb（硫酸奎宁）荧光素染剂0.01 ppb0-500 ppb若丹明染剂0.01 ppb0-1000 ppb硫酸奎宁染剂0.01 ppb0-650 ppb浊度0.05 NTU0-3000 NTU物理参数长×宽14.48 x 2.23 cm重量160g工作环境温度范围环境温度 0-5-℃水温-2—50℃深度600米信号输出0-5VDC工作电压3-15VDC功率＜ 300mW 更多关键词：荧光仪,水下荧光仪,叶绿素传感器

DIVING-PAM全球第一款水下调制荧光仪Schreiber教授因发明PAM系列调制叶绿素荧光仪而获得首届国际光合作用协会（ISPR）创新奖DIVING-PAM是全世界唯一的一款可以原位研究水下植物（大型海藻、水草、珊瑚、沉水植物、&ldquo 藻垫&rdquo 和附着藻类等）光合作用的仪器，可达50米深度。它开创了在现场研究这些植物的光合作用的先河。DIVING-PAM在世界各地甚至是南、北极地区都有广泛应用。DIVING-PAM是由超便携式调制叶绿素荧光仪MINI-PAM演化而来的，后者已被证明是野外光合作用研究的强大工具。DIVING-PAM的光电元件和操作软件与MINI-PAM相同，但DIVING-PAM的外壳采用了全防水设计，特别适合水下操作。DIVING-PAM的按键非常灵敏，在水下只需用指尖轻轻一摁即可。主机和样品之间通过非常柔软的光纤连接，有多种特制叶夹可选。DIVING-PAM可以存储4000组数据，利用Windows操作软件WinControl可以进行数据传输、数据分析和遥控操作。利用DIVING-PAM在海底原位测量澳洲大堡礁珊瑚的光合作用主要功能 *仪器全防水设计，耐受50m水压 *可测荧光诱导曲线并进行淬灭分析 *可测光响应曲线和快速光曲线（RLC） *51个内置模式菜单，方便参数设置和标准测量 *可测水温、水深和PAR *光感式按键，方便水下使用应用领域应用于水生生物学与海洋生物学、潮间带生态学、珊瑚研究、湖泊生态学等领域。原位测量珊瑚、大型海藻、沉水植物生理活性的唯一仪器。也可用于测量雨季陆生高等植物的光合活性。可测量微藻，但不太适合于自然水体中的浮游植物测量。测量参数Fo,Fm,F,Fm' ,Fv/Fm,Y(II)=&Delta F/Fm' ,qP,qN,NPQ,ETR,PAR,水深和温度等。系统组成①微型光量子探头适配器，用于水下原位测量PAR。⑵磁性样品架DIVING-MLC（可选附件），分上、下两部分，可以靠磁性夹住叶片进行暗适应。上部覆盖带弹性的橡胶皮，中间开一条缝。光纤可从缝中插入，光纤插入后缝自动闭合，不会漏进环境光。③暗适应叶夹DIVING-LC（可选附件），塑料制，重量轻。也可用PAM-2100和MINI-PAM的暗适应叶夹DLC-8代替。④暗适应适配器。光纤可深入暗适应适配器中固定好，测量时放到暗适应叶夹DIVING-LC的上部，打开DIVING-LC的滑片即可。⑤遮光板，装在光适应样品架DIVING-USH的底部，阻挡底部反射光。⑥水下样品架DIVIN-USH⑦全防水设计的主机⑧表面样品室DIVING-SH(可选附件)，特别适合测量珊瑚时用。改样品室四周有4个带橡皮筋的挂钩，可以牢牢固定在凹凸不平的珊瑚表面。主要技术参数测量光：红色发光二极管（LED），650nm；标准光强0.15&mu molm-2s-1PAR；调制频率0.6或20kHz，自动转换。光化光：卤素灯，8V/20W，蓝色增强，&lambda 710nm；选择性锁相放大器（专利设计）。数据存储：CMOSRAM128KB，可存储4000组数据测量参数：Fo,Fm,Fm&rsquo ,F,Fv/Fm(max.Yield),&Delta F/Fm&rsquo (Yield),qP,qN,NPQ,ETR,PAR和叶温等。环境温度：-5～＋40℃，在南、北极有成功应用。部分文献1.BorellEM,RomatzkiSBC,FerseSCA:DifferentialphysiologicalresponsesoftwocongenericscleractiniancoralstomineralaccretionandanelectricfieldCoralReefs2010,29(1):191-200.[DIVING-PAM]2.ChevalierEM,Gé vaertF,Cré achA:Insituphotosyntheticactivityandxanthophyllscycledevelopmentofundisturbedmicrophytobenthosinanintertidalmudflat.JournalofExperimentalMarineBiologyandEcology2010,385:44-49.[DIVING-PAM]3.EdwardsMS,KimKY:DiurnalvariationinrelativephotosyntheticperformanceingiantkelpMacrocystispyrifera(Phaeophyceae,Laminariales)atdifferentdepthsasestimatedusingPAMfluorometryAquaticBotany2010,92(2):119-128.[DIVING-PAM]4.GreenDH,EdmundsPJ,PochonX,GatesRD:Theeffectsofsubstratumtypeonthegrowth,mortality,andphotophysiologyofjuvenilecoralsinSt.John,USVirginIslandsJournalofExperimentalMarineBiologyandEcology2010,384(1-2):18-29.[DIVING-PAM]5.MarquardtR,SchubertH,VarelaDA,HuovinenP,Henrí quezL,BuschmannAH:Lightacclimationstrategiesofthreecommerciallyimportantredalgalspecies.Aquaculture2010,299:140-148.[DIVING-PAM]6.OchiengCA,ShortFT,WalkerDI:Photosyntheticandmorphologicalresponsesofeelgrass(ZosteramarinaL.)toagradientoflightconditionsJournalofExperimentalMarineBiologyandEcology2010,382(2):117-124.[DIVING-PAM]7.AbreuMH,VarelaDA,Henrí quezL,VillarroelA,YarishC,Sousa-PintoI,BuschmannAH:Traditionalvs.IntegratedMulti-TrophicAquacultureofGracilariachilensisC.J.Bird,J.McLachlan&E.C.Oliveira:ProductivityandphysiologicalperformanceAquaculture2009,293(3-4):211-220.[DIVING-PAM]8.AlmeidaCMR,DiasAC,MuchaAP,BordaloAA,VasconcelosMTSD:InfluenceofsurfactantsontheCuphytoremediationpotentialofasaltmarshplantChemosphere2009,75(2):135-140.[DIVING-PAM]9.CantinNE,vanOppenMJH,WillisBL,MieogJC,Negri2AP:Juvenilecoralscanacquiremorecarbonfromhigh-performancealgalsymbiontsCoralReefs2009,28(2):405-414.[DIVING-PAM]10.ChartrandKM,DurakoMJ,BlumJE:EffectofhyposalinityonthephotophysiologyofSiderastrearadiansMarineBiology2009,156(8):1691-1702.[DIVING-PAM]11.CollierCJ,LaveryPS,RalphPJ,MasiniRJ:Shade-inducedresponseandrecoveryoftheseagrassPosidoniasinuosaJournalofExperimentalMarineBiologyandEcology2009,370(1-2):89-103.[DIVING-PAM]12.DavoultD,Migné A,Cré achA,Gé vaertF,HubasC,SpilmontN,BoucherG:Spatio-temporalvariabilityofintertidalbenthicprimaryproductionandrespirationinthewesternpartoftheMontSaint-MichelBay(WesternEnglishChannel,France)Hydrobiologia2009,620(1):163-172.[DIVING-PAM]13.DownsCA,Kramarsky-WinterE,WoodleyCM,DownsA,WintersG,LoyaY,OstranderGK:Cellularpathologyandhistopathologyofhypo-salinityexposureonthecoralStylophorapistillataScienceofTheTotalEnvironment2009,407(17):4838-4851.[DIVING-PAM]14.Enrí quezS,Á vilaE,CarballoJL:PhenotypicplasticityinducedintransplantexperimentsinamutualisticassociationbetweentheredalgaJaniaadhaerens