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【分享】Rt-PCR经验总结

PCR

  • Rt-PCR实验步骤
    一、实验器具与材料:
    1、移液枪:1ml、200μl、20μl、10μl、2μl
    2、吸头:1ml、200μl、20μl
    3、匀浆管:5ml
    4、吸头台:放置1ml吸头的一个,放置20μl吸头的一个
    5、EP管:1.5ml、0.2ml、100μl
    6、试剂瓶:2个60ml的棕色试剂瓶(广口,带盖)
    1个125ml的白色试剂瓶(放无水乙醇)
    7、量筒:50ml、250ml、500ml
    8、容量瓶:250ml、500ml、1000ml
    9、试管架:5ml、1.5ml、20μl
    10、盐水瓶:250ml、500ml各2个备用,一个装无水乙醇,另一个装DEPC水
    11、铝制饭盒:4个
    12、塑料小饭盒:1个
    13、大瓷缸:2个
    14、锡泊纸:一卷
    15、卷纸:2卷
    16、三角烧瓶:带盖,稍大

    二、实验器具的处理与准备
    1、塑料制品:(包括枪头、EP管、匀浆管等)
    先将DEPC水从容量瓶中倒入瓷缸中,将塑料制品逐个浸泡其中,其中小枪头需要吸管打入DEPC水,过夜,然后高压,再烤干备用,实验前将枪头等放入吸头台,再高压一次(EP管)
    2、玻璃制品:泡酸过夜,冲洗干净,蒙锡纸烤干备用(DEPC水泡)(洗净后先泡1‰DEPC过夜,再烤干)
    3、匀浆器:(包括剪刀、镊子)先洗净后,再高压(不需要泡DEPC)

    三、试剂配制:
    1、DEPC水:吸出1ml放在1000ml双蒸水中配成1‰DEPC水,放在1000ml容量瓶中静置4小时备用。
    2、75%乙醇:用无水乙醇+DEPC水配,然后放-20℃保存(其中DEPC水需先高压)
    3、异丙醇:放入棕色瓶中
    4、氯仿:放入棕色瓶中
    5、琼脂糖
    四、几种缓冲液的配制:
    1、电泳缓冲液:
    Tris 54g
    硼酸 27.5g
    0.5M EDTA 20ml? pH8.0
    蒸溜水 1000ml

    5×TBE (贮存液)
    再将5×TBE稀释10倍成0.5TBE就可以在电泳时使用(即工作液浓度),如取50ml贮存液+450ml水——→500ml工作缓冲液

    2、上样缓冲液:
    0.25%溴酚蓝
    0.25%二甲苯青FF
    30%甘油

    6×缓冲液,4℃保存

    五、琼脂糖凝胶的配制:
    1、1.0%:
    1.0g琼脂糖+100ml电泳缓冲液,微波炉中火30秒至沸腾,熔化的琼脂物冷却至60℃时加入10mg/ml溴化乙锭2.5μl,充分混匀,将温热的凝胶倒入已置好梳子的胶膜中,在室温下放置30-45min后现进行电泳。

    2、1.5%:
    同上,将琼脂糖的量改为1.5g
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  • 夜市

    第1楼2007/02/07

    六、需购置的Rt-PCR材料:
    (生工. Tel. 2236106.)
    Taq酶(含MgCl2 Buffer) 200u 70.00
    dNTP: 1支
    oligo(dT)15: 1 OD 40.00 promega
    M-MLV: 1支 250.00 promega (Buffer)
    RNasin: 1支 110
    —— -20℃

    DEPC 5g 110.00
    Trizol 100ml/1瓶 Invitrogen Life technologies
    —— 4℃

    Marker: 10μg 0.2μg/ml 150.00 科威
    (1543. 994. 697. 515. 377. 231)
    七、引物合成
    1、内参照:
    GAPDH
    正义:5′—ACCACAGTCCATGCCATCAC—3′
    反义:5′—TCCACCACCCTGTTGCTGTA—3′

    β-actin
    正义:5′—CACGATGGAGGGGCCGGACTCATC—3′
    反义:5′—TAAAGACCTCTATGCCAACACAGT—3′

    2、par-4:
    正义:5′—GGGACCTCGGAACTCAAC—3′
    反义:5′—TGTATCTGCCTGGGACTG—3′

    3、退火温度计算
    2(A+T)+4(G+C)
    正反义平均数,再上下波动度(±4℃,或±5℃)

    4、引物各合成5 OD,每OD一瓶分装好

    5、引物稀释:
    加DEPC水量为(μl)
    = ? nmol / OD × 管上所标OD数×100
    是为10p mol / μl 浓度的引物溶液

    八、PCR产物电泳
    先将1-10μl左右PCR产物,加已点在纸上的溴酸兰,反复吸打混匀后进行电泳,一般电流为10mA,电源100V,电泳30分钟,紫外灯下观察,满意的结果扫描打印。

    九、几个注意点:
    1、逆转录的关键步骤是立即冰水浴?
    2、Rt时,先打开PCR预热30分钟。
    3、RNA抽提前,打开离心机预冷。

    在所有RNA实验中,最关键的因素是分离得到全长的RNA。而实验失败的主要原因是核糖核酸酶(RNA酶)的污染。由于RNA酶广泛存在而稳定,一般反应不需要辅助因子。因而RNA制剂中只要存在少量的RNA酶就会引起RNA在制备与分析过程中的降解,而所制备的RNA的纯度和完整性又可直接影响RNA分析的结果,所以RNA的制备与分析操作难度极大。
    在实验中,一方面要严格控制外源性RNA酶的污染;另一方面要最大限度地抑制内源性的RNA酶。RNA酶可耐受多种处理而不被灭活,如煮沸、高压灭菌等。
    外源性的RNA酶存在于操作人员的手汗、唾液等,也可存在于灰尘中。在其它分子生物学实验中使用的RNA酶也会造成污染。这些外源性的RNA酶可污染器械、玻璃制品、塑料制品、电泳槽、研究人员的手及各种试剂。而各种组织和细胞中则含有大量内源性的RNA酶。

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  • 夜市

    第2楼2007/02/07

    一、 防止RNA酶污染的措施
    1. 所有的玻璃器皿均应在使用前于180℃的高温下干烤6hr或更长时间。
    2. 塑料器皿可用0.1% DEPC水浸泡或用氯仿冲洗(注意:有机玻璃器具因可被氯仿腐蚀,故不能使用)。
    3. 有机玻璃的电泳槽等,可先用去污剂洗涤,双蒸水冲洗,乙醇干燥,再浸泡在3% H2O2 室温10min,然后用0.1% DEPC水冲洗,晾干。
    4. 配制的溶液应尽可能的用0.1% DEPC,在37℃处理12hr以上。然后用高压灭菌除去残留的DEPC。不能高压灭菌的试剂,应当用DEPC处理过的无菌双蒸水配制,然后经0.22μm滤膜过滤除菌。
    5. 操作人员戴一次性口罩、帽子、手套,实验过程中手套要勤换。
    6. 设置RNA操作专用实验室,所有器械等应为专用。
    二、常用的RNA酶抑制剂
    1. 焦磷酸二乙酯(DEPC):是一种强烈但不彻底的RNA酶抑制剂。它通过和RNA酶的活性基团组氨酸的咪唑环结合使蛋白质变性,从而抑制酶的活性。
    2. 异硫氰酸胍:目前被认为是最有效的RNA酶抑制剂,它在裂解组织的同时也使RNA酶失活。它既可破坏细胞结构使核酸从核蛋白中解离出来,又对RNA酶有强烈的变性作用。
    3. 氧钒核糖核苷复合物:由氧化钒离子和核苷形成的复合物,它和RNA酶结合形成过渡态类物质,几乎能完全抑制RNA酶的活性。
    4. RNA酶的蛋白抑制剂(RNasin):从大鼠肝或人胎盘中提取得来的酸性糖蛋白。RNasin是RNA酶的一种非竞争性抑制剂,可以和多种RNA酶结合,使其失活。
    5. 其它:SDS、尿素、硅藻土等对RNA酶也有一定抑制作用。
    mRNA的分离与纯化
    真核细胞的mRNA分子最显著的结构特征是具有5’端帽子结构(m7G)和3’端的Poly(A)尾巴。绝大多数哺乳类动物细胞mRNA的3’端存在20-30个腺苷酸组成的Poly(A)尾,通常用Poly(A+)表示。这种结构为真核mRNA的提取,提供了极为方便的选择性标志,寡聚(dT)纤维素或寡聚(U)琼脂糖亲合层析分离纯化mRNA的理论基础就在于此。
    mRNA的分离方法较多,其中以寡聚(dT)-纤维素柱层析法最为有效,已成为常规方法。此法利用mRNA 3’末端含有Poly(A+)的特点,在RNA流经寡聚(dT)纤维素柱时,在高盐缓冲液的作用下,mRNA被特异地结合在柱上,当逐渐降低盐的浓度时或在低盐溶液和蒸馏水的情况下,mRNA被洗脱,经过两次寡聚(dT)纤维柱后,即可得到较高纯度的mRNA。

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