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液相色谱柱天理性质对分离的影响,蛋白质分析。

  • wangjun53022263
    2020/02/20
  • 私聊

测试版面

  • 正在研究某种蛋白处方,检测条件流动相A 水+0.1%TFA,流动相B 乙腈+0.08%TFA,色谱柱C-18 4.6×250mm,粒径300埃,研究了几个处方,进液相检测,蛋白出锋正常;另外几个处方,蛋白出现平头锋或双头锋,但是跑电泳,离子色谱,凝胶色谱都正常,请问专家,怎样改变检测条件,让其出正态分布的色谱峰。注:上样量没问题,液相没问题,色谱柱绝对没问题。还有如何提高分离度,我现在的分离度是1.1-1.2左右(生物制药),请问在申报时,此液相方法是否有问题,如何改进(我现在的梯度已经很缓了)。我在考虑采用小粒径的色谱柱,但是蛋白的直径太大(一般来说检测蛋白要采用大孔径的填料,一般是300埃,),我要是用50-100埃的会不会好些?一直不改试,担心色谱柱被堵上,或者由于粒径小导致色谱峰变宽。
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  • junxi2008

    第1楼2020/02/20

    你说的300埃是硅胶颗粒的表面孔径,而不是粒径,做蛋白质是应该用大孔径的填料,但可以用小粒径的填料,不要用50-100埃表面孔径的柱子。
    请查一下你用的柱子粒径是多少,一般C-18柱的粒径是5μ,可以换3μ的试试,但压力可能会比较高。
    你说梯度已经很缓了,但还是建议在目标峰附近的梯度变化可以更缓,甚至用区段的等度,远离目标峰的流动相比例段可以变快一些。
    另外有点奇怪,流动相B中TFA的浓度一般与流动相A是一致的,都是1%,不明白用0.08%的有什么优点。
    你说的平头峰是不是超出响应范围的那种,如果是,那就是超载了,除非你用不是280nm而是205、210等末端吸收波长。
    双头峰应该就是两个峰。
    再有,如果降低进样量,分离度也会有改善。
    以上供参考。

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