布鲁克JPK CellHesion 300 生物型原子力显微镜_价格-冠乾科技（上海）有限公司

产品详情

CellHesion® 300

自动化的布鲁克 JPK CellHesion 300 生物型原子力显微镜是以单分子灵敏度测量细胞-细胞，细胞-组织，细胞-基底相互作用的理想工具。其出现使得对于活的生物系统的结构、形貌以及纳米力学性能的测量变得方便快捷，展示这些性能在不同病理疾病中扮演的角色。这一开创性的系统创造了无数的生物物理、生物化学，移植，伤口愈合，发育生物学，干细胞、感染生物学，免疫学中的应用可能。

更高的通量

提升效率

自动化的过程以及更大的样品尺寸展示了生物医学以及前临床研究中的统计学意义。

生物力学

SmartMapping 特色

简单快捷地选择大尺寸样品中多个感兴趣的区域。灵活的、用户自定义的2D力谱图。

无需标记物的测量

组织活检

活样品在接近生理条件下多参量纳米力学表征。适用于多层细胞结构以及软的起伏大的组织样品。

FEATURES

让生物力学变得通俗易懂

布鲁克 JPK CellHesion 300 生物型原子力显微镜提供可重复的、高品质的、定量的数据。高度自动化增加了测试通量，提高了生产效率，提供了生物医学以及临床研究中必需的统计学意义。而且重要的参数，如最大粘附力，单独的折叠，tether 特征等，可通过开创性的软件自动获取。

布鲁克 JPK CellHesion 300 生物型原子力显微镜能提供：

自动化测试实现最大化的通量，更高的生产效率

近生理条件下无标记多相关参量纳米力学量测

在大样品上简单快捷选择不同感兴趣的区域，组织活检

具有视觉支持的系统化工作流程

左图：在基底或者目标细胞上用于细胞黏附测试的单个3T3纤维细胞（绿色，FDA染色）修饰的探针。右图：在单细胞力谱（SCFS）实验中，一个与探针进行生物化学交联的活细胞（如通过功能化修饰）。蓝色是细胞以给定的力与结合目标接触（1）。在用户给定的结合时间后，通过回拉探针使得细胞与目标分离（2）。分离的阻力被探针的弯曲量定量测量。

小提琴图显示了用单细胞力谱获得的单个3T3老鼠纤维细胞与含有不同涂层的聚丙烯凝胶的分离能（W），力（F），以及距离（D）的分布图。样品数据来自于柏林自由大学的Dr. Stephanie Wedepohl.

“利用CellHesion 300对大起伏样品进行自动化力学性能筛选是临床方面组织表征的巨大进步。”

---来自Ansgar Petersen教授

再生医疗中心，BIH

夏洛特医学院，柏林，德国

自动化多参数纳米力学成图

先进的软件，独创的用户向导，探测系统自动对焦是实现自动化操作以及快扫结果的关键。

新一代CellHesion 300用户界面赋予用户简单快捷地掌控这一系统以及操作参数。

软件为用户自定义实验提供了便于使用的编辑工具。功能强大的数据批量处理功能使得用户可以一键定量分析大的数据包。

探索更大可能

通过可选的Z-扫描器和NestedScanner功能，在更大的频率范围内绘制大起伏样品的粘弹性能图。

通过丰富的附件控制环境条件，如温度和二氧化碳水平，在接近生理条件下研究活体细胞

大样品自动探索

新的SmartMapping功能能够选择灵活的、用户定义的二维形状的力谱图。通过新的大比例的Z-马达不断评估和自动调整最佳的力采集范围。利用光学tiling，可以提前选择多个感兴趣的区域并自动测试，可以轻松有效地研究大样品的不同区域。改进的电动平台精度提供了首屈一指的精度和速度。

与光学显微镜无缝整合

CellHesion 300可以与最新的先进的和超分辨的光学显微镜无缝集成，为活体生物样本的全面表征提供实时、相关联的数据集。多样化的实验设置和系统参数的自动调整为长期的、自我调节的系列实验提供了新的可能性。CellHesion 300是研究粗糙表面、密堆积的细胞层和大起伏组织样品的理想解决方案。

绵羊肌肉组织横截面上的用户定义形状的力谱图与光学荧光tiling图像（标尺为100微米）叠加。用phalloidin-TRITC（红色）对富含肌动蛋白丝的肌肉纤维染色，用DAPI（蓝色）对细胞核染色。内部暗区描述了未标记的结缔组织。力谱图是在SmartMapping模式下获得的，可同时进行具有大起伏的样品的高度测量。上方插图：杨氏模量值的分布图。下方插图：组织样品上两个不同位置的存储模量和损耗模量图（蓝色圆圈和橙色方形）。绵羊肌肉样品也用于封面图片。样品由德国柏林夏洛特医学院再生医疗中心BIH的Ansgar Petersen教授博士提供。

在蔡司Axio Observer倒置显微镜上装置的具有直观的软件界面的CellHesion 300。

利用CellHesion发表的学术论文选集

Abuhattum et al., Adipose cells and tissues soften with lipid accumulation while in diabetes adipose tissue stiffens. Sci Rep 12, 10325 (2022).
Michael et al., Measuring the elastic modulus of soft culture surfaces and three-dimensional hydrogels using atomic force microscopy. Nat Protoc 16, 2418–2449 (2021).
Liebsch et al., Quantification of heparin’s antimetastatic effect by single-cell force spectroscopy. J Mol Recognit. 34, e2854 (2021).
Möllmert et al., Zebrafish Spinal Cord Repair Is Accompanied by Transient Tissue Stiffening. Biophys J. 118(2), 448-463 (2020).
Shen et al., Reduction of Liver Metastasis Stiffness Improves Response to Bevacizumab in Metastatic Colorectal Cancer. Cancer Cell 37(6), 800-817 (2020).
Rheinlaender et al., Cortical cell stiffness is independent of substrate mechanics, Nat. Mater. 19, 1019–1025 (2020).
Aaron at al., Quantification of heparin's antimetastatic effect by single-cell force spectroscopy, J Mol Recognit., 1–11 (2020).

Krieg et al., Atomic force microscopy- based Mechanobiology, Nature Reviews Physics 1, 41–57 (2019)
Stylianou et al., Review Article: Atomic Force Microscopy on Biological Materials Related to Pathological Conditions, Andreas, Scanning, 8452851 (2019)
Thompson et al., Rapid changes in tissue mechanics regulate cell behaviour in the developing embryonic brain. eLife 8:e39356 (2019)
Miroshnikova et al., Adhesion forces and cortical tension couple cell proliferation and differentiation to drive epidermal stratification, Nat Cell Biol 20, 69–80 (2018)
Elias et al., Tissue stiffening coordinates morphogenesis by triggering collective cell migration in vivo, Nature 554, 523-527 (2018)
Bharadwaj et al., aV-class integrins exert dual roles on a5b1 integrins to strengthen adhesion to fibronectin, Nature Communications 8, 14348, 1-10 (2017)
Friedrichs et al., A practical guide to quantify cell adhesion using single-cell force spectroscopy. Methods (2013)

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型号：	JPK CellHesion 300
产地：	德国
品牌：	布鲁克
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