流式细胞周期分析

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流式细胞周期分析相关的厂商

  • 广州吉妮欧生物科技有限公司致力于生物医药领域的技术研发与生物试剂的销售,专业提供实验所需的各类细胞,因子,抗体,胎牛血清及培养基等多种生物试剂。细胞主要来源ATCC,ECACC,ScienCell,ACC, Invitrogen等,同时提供各种技术服务 整体课题 论文(SCI)服务等。 整体课题外包和整体实验服务1、动物模型:糖尿病模型、帕金森动物模型、脑中风动物模型、脊髓损伤动物模型、肝损伤动物模型、裸鼠成瘤模型、腹腔注射、灌胃、尾静脉注射等。2、细胞功能检测:慢病毒、腺病毒、合成试剂或RNAi类产生的基因过表达或基因沉默、细胞迁移和侵袭检测、细胞凋亡检测(tunel和流式检测)、细胞周期检测(流式方法、Brdu)、细胞克隆形成、淋巴细胞分离、原代细胞分离培养、耐药细胞株建立、稳转株的构建等。3、分子生物学实验:RT-PCR、QPCR、载体构建、基因芯片等4、蛋白检测:免疫组化、westerblot、ELISA、蛋白芯片等。5、病理检测:HE染色、病理分析等。【地址】广州高新技术产业开发区科学城科丰路31号G5栋407室 【联系】18520130139 Q3162285861
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  • 杭州合众生物科技有限公司成立于2009年,专业从事生物、医药、化工、医疗领域产品推广及技术服务,公司业务涉及生物实验仪器、医疗器械、生物医药进出口、技术服务等多个方向。公司以“合众人之力,将服务传递”为理念,坚持为客户提供优质的产品和服务。公司自创立至今已成为国内外多家知名厂商在浙江地区的签约代理及售后服务合作伙伴。浙江省总代理:美国Beckman:离心机、流式细胞分析仪、毛细管电泳、仪液工作站等 美国MD:酶标仪、荧光化学发光检测仪、细胞成像、细胞切割 美国ABI:荧光定量PCR、激光捕获显微切割系统 德国凯杰:核酸提取系统、全自动核酸定量分析系统 瑞士Bioengineering:生物反应器、发酵罐 加拿大ATS:高压均质机、高压细胞破碎仪 加拿大Avestin:脂质体挤出器 浙江省特约经销: 美国Lanconco:冻干、离心浓缩 德国UIC:分子蒸馏(短程蒸馏)、超临界萃取
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  • 福州科远贸易有限公司是一家专业以咨询、销售、技术、售后服务为一体的综合性公司。 主要总代理品牌有: 美国ThermoFisher Scientific (奥利龙(Orion)水质分析仪器,Eutech优特水质分仪,离心浓缩系统,培养箱,烘箱,马弗炉,管式炉,环境实验箱,搅拌器等) 瑞士Tecan (酶标仪,洗板机,全自动液体处理工作站) 美国MP (全自动样品制备系统,土壤试剂盒) 美国安捷伦生物 (流式细胞分析仪,实时细胞细胞无标识分析仪,心肌细胞分系统) 美国思拓凡(原美国GE公司)(蛋白纯化系统,分子相互分析系统,成像系统) 德国Greiner(各类细胞培养耗材,各酶标板,离心管,瓶存管) 美国Ohaus (天平,PH计,离心机,样品混均仪,脱色摇床) 德国宾德(Binder)(二氧化碳培养箱,超低温冰箱,高低温箱,烘箱等) 英国安维迪(原美国PALL) 纯水,超纯水系统
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流式细胞周期分析相关的仪器

  • 生命科学的研究已进入了细胞组学的研究,科学家们渴求探究细胞深层次和综合性信息,既提供细胞群体的群体信息,也关注个体细胞的差异,既能看到细胞表型的特点,更能研究细胞的功能,但目前的流式细胞技术已无法满足科学家们的应用需求。Merck Millipore公司2012年推出的FlowSight多维全景流式细胞仪第一次实现了从群体到个体,从表型到功能的综合细胞分析,引领流式细胞技术进入了崭新的时代。 FlowSight是下一代专家级流式细胞仪FlowSight是一款体积小巧,但是功能强大的下一代专家级流式细胞仪。该系统革命性地设计提高了信噪比以及荧光检测的灵敏度。标配12个检测通道,除了传统荧光强度信息,还能获得&ldquo 每个细胞&rdquo 的明场、暗场以及10个荧光图像。FlowSight可以最多配置四根激光管(405, 488, 561, 642 nm),并加配785nm激光器专用于SSC信号检测,同时还可配置96孔板自动上样系统(AutoSampler)。FlowSight具有低于10MESF的超高检测灵敏度,特别对于弱信号的检测,有明显的优势。 FlowSight突破传统流式局限,实现圈门不再靠猜FlowSight与其他传统流式细胞仪不同之处在于它带来了每个细胞的真实图像。对于每个细胞,它能够生成12张图片。所获得的图片能够鉴别来自细胞质、细胞膜和细胞核的荧光。您只需点击散点图中的每个点或直方图中的每个点,即可查看与之对应的细胞图片。因此使用者再也不用靠猜测来判断设门是否准确。在FlowSight中,设门后,使用者可以通过观察所设门内外的细胞图片来确认设门是否准确。 FlowSight拓展了流式细胞技术的应用范围,获得前所未有的深入的细胞信息1. 细胞周期细化分析FlowSight可以将细胞周期分析和有丝分裂细胞分析结合起来。如下图所示,研究人员利用FlowSight对THP-1细胞周期进行分析(如下图左图所示),通过观察每个时期的细胞图片,FlowSight不仅可以分析细胞的G0/G1,S,G2/M期,还可将M期细分为分裂前期,中期,晚期,末期,获得最全面的细胞周期数据。 2. 八色免疫分型免疫分型通常用来鉴别血细胞亚群。FlowSight最多能够同时检测10色荧光,最大程度地满足研究者的实验需求。在这个例子中,研究人员用抗CD45, CD14, CD16, CD19, CD3, CD4和 CD123的抗体以及DAPI染料对细胞进行标记。通过一系列设门分析,他们鉴别了以下细胞类群: (A) CD3+ T细胞, CD4+ 辅助T细胞 (B) CD16+ 粒细胞 (C) CD19+ B 细胞 (D) CD14+ 单核细胞 (E) CD123+ pDC/嗜碱性粒细胞. 3.NFkB核转位研究NF-&kappa &beta 作为一种广泛存在的转录因子,被激活由胞浆转入胞核,从而参与炎症反应、免疫反应、细胞凋亡、肿瘤发生等。可以将细胞核和NF-&kappa &beta 分别用DAPI和FITC染色,FlowSight可观察每个细胞是否发生 NF-&kappa &beta 核转位,并量化分析NFkB核转位程度以及发生核转位细胞的比例。FlowSight革命性地光路设计,实现独特应用FlowSight系统平台也是由液流系统,光学系统和电子系统等三大部分组成。液流系统将样本细胞悬液和系统鞘液注入流动室中,使细胞在鞘液流的约束下聚焦在液流的中心,逐个流过检测窗口。光学系统中光源照射通过检测窗口的细胞,从而产生光信号。光源分为两种,其一用于产生明场细胞图像,另一种是用于产生荧光细胞图像的激光器。光源照射细胞产生的光信号被大数值孔径的物镜收集,然后通过光路系统传递到由二向色镜构成的滤光片堆栈(Dichroic Filter Stack)。光信号在这里被分成不同波段投射到TDI CCD的相应检测通道上,产生一个明场细胞图像,一个暗场细胞图像(Side Scatter,SSC)及至多10个不同荧光通道的细胞图像。FlowSight的光路系统能够自动调整焦距,并实时测定细胞运动速度,而其采用高端航空遥拍CCD进行信号采集,信噪比比PMT提高10-20倍,上述这些手段保证了系统采集到的细胞图像的质量和荧光信号的灵敏度。 综上,FlowSight多维全景流式细胞仪,采用革命性的技术,解决了传统流式细胞仪无法获得细胞个体信息的局限,真正让流式细胞仪睁开了&ldquo 眼睛&rdquo ,不仅可以对大量细胞进行统计学分析,而且还能观察细胞形态,极大地拓展了传统流式细胞仪的应用。虽然FlowSight是在2011年推出的,但是Amnis公司的下一代流式技术已经非常成熟,全球装机已经超过200台,超过300篇文献发表,其中大量Nature、Science和Blood等高水平文章。
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  • InvitrogenTM AttuneTM NxT,快速且不堵的流式细胞仪!突破传统流式50年技术瓶颈,创新的声波聚焦技术助力流式新发现!Invitrogen Attune NxT流式细胞仪是一款全新的台式流式细胞分析仪,采用创新的声波聚焦技术,在保证高精确度的同时可以10倍极速上样;仪器配置灵活,最高可达4激光14色,可满足各种实验方案和实验室预算要求。Attune NxT流式细胞仪具有以下优势:专利声波聚焦技术,实现极速精准上样;专业防堵塞,大细胞、粘细胞轻松上;稀有细胞超灵敏高通量分析,全血样本免洗免裂解;顶级平顶光斑激光器,无需调光路;配置可达4激光16参数,模块化设计,可现场升级;可配备自动化工作站,实现24小时无人值守上样。什么是声波聚焦?Attune NxT流式细胞仪采用超声波 (超过2 MHz) 和流体动力学双重聚焦模式,将样本细胞沿液流的中心轴汇聚成一条直线。声波聚焦基本不受进样速率的影响,这使细胞能够强聚焦于激光检测点,与样本-鞘液的比率无关,所以可以在极高的样本通量下实现高精度分析。此外,Attune NxT利用注射泵进样系统进行上样,无需绝对计数微球即可实现细胞绝对计数——可最大程度地降低成本,缩短样本制备时间。相比之下,采用单纯流体动力学聚焦的流式细胞仪最高进样速度受限,而且提高流速会增大样本核心流的宽度、细胞重合率升高,使得检测信号的CV值变大。稀释样本,但不影响数据质量裂解红细胞 (RBC) 会造成待测细胞的损失和损伤。极高的样本采集速率(高达1,000 μL/分钟)使得Attune NxT流式细胞仪能够提供免洗免裂解的实验方案,最大程度地避免细胞损失,简化样本制备过程。该特性尤其适用于那些浓度较低的样本,诸如海水、脑脊液 (CSF)、干细胞及细胞数量较少的稀释样本,这些样品分析的采集时间通常较长。采用Attune NxT流式细胞仪,即便是稀释样本,亦可快速采集,且不影响数据质量。可以对诸如小鼠血液和骨髓等难以采集的样本、细针抽吸样本或低细胞产量的样本直接进行荧光标记然后稀释上样,无需洗涤或进行红细胞裂解。在高样本采集速率下可轻松实现采集——您可在四分钟内运行至多4 mL样本。这种样本制备过程不会造成样本损失,且可对所有珍贵样本进行全面检测。快速检测稀有细胞少量细胞群体的分析需要多次采集才能获得准确且值得信赖的结果,这导致其采集时间较长。Attune NxT流式细胞仪的样本运行速率比其他流式细胞仪快10倍——高达1,000 μL/分钟,每次运行能采集2 x 107个细胞,可以快速且准确地检测稀有细胞,且不影响数据质量。在各种进样速率下保证同样的精度和灵敏度Attune NxT流式细胞仪可以在您需要时提供更高的灵敏度。即便是在1,000 μL/分钟的高进样速率下,您也可以维持精确的聚焦。声波聚焦提供的精确聚焦使研究人员能够获得更小的CV值,更好地检测弱荧光信号和背景,从而减少差异,改善信号分离效果 。最大程度地减小数据差异细胞周期分析是必须精确检测多个细胞群体之间的荧光强度差异的实例之一。采用Attune NxT流式细胞仪,不论样本进样速率如何变化,都可以最大程度地减小结果的差异。即使采用高流速上样,也可以获得相同的实验结果 。符合您的规格标准的软件Attune NxT软件采用直观且易于使用的界面,能提供强大的数据采集和分析功能。您可以方便地建立、自定义并保存实验供将来研究之用。自动进行补偿,并可根据补偿指南进行设置。分析软件为数据分析效率最大化设计,其对较大的数据组的刷新速度快 (高达2,000万次/样本),当您作出调整时,能够立即显示于数据曲线上。软件采用独特的工具简化了实验设置,包括利用滤光片配置管理器进行试剂选择。您可以从预置或定制试剂下拉菜单中选择试剂,根据仪器上的优化通道匹配适当的试剂,然后应用于曲线标志。服务与支持Attune NxT流式细胞仪可享受全球技术支持和服务项目。我们致力于提供个性化的服务,自从您向我们的销售代表购买Attune NxT仪器之日起,仪器可终生享受服务。Attune NxT流式细胞仪可享受一年的全面服务计划,包括:? 综合培训 (每台仪器2位用户)? 应用和分析支持? 全球技术服务? 预防性维护应用领域 ? 癌症 ? 免疫学? 侧群细胞分析 ? 人类间充质干细胞 ? 细胞周期分析 ? 细胞增殖 ? 免疫分型 ? 海洋样品分析 ? 微生物学? 植物研究 ? 磷酸化蛋白检测
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  • NovoCyte Penteon是一台灵敏的流式细胞仪,具有5激光和多达30个荧光通道。它具有出色的灵敏度、分辨率、速度和灵活性。它还具有7.2 log的宽动态范围以及全自动补偿功能,让用户能够在同一实验中检测暗淡信号和明亮信号。在上一代智能化流式细胞仪基础上,提供了更强大的处理能力,以适应更高端的使用需求。搭载自动上样系统NovoSampler Q,兼容40管流式管架、 24/48/96/384孔板等多种上样方式,还可以整合到不同的实验室自动平台。简便及友好的NovoExpress 软件,在数据获取、分析及报告方面带来更可期待的用户体验。仅限研究使用。不可用于诊断目的。- 5激光30荧光通道- 超凡灵敏度和分辨率- 软件功能强大,支持数据边获取边分析- 智能化设计,操作无需人工值守,简化工作流程- 高通量检测自动完成- 10^7.2宽动态范围检测,无需电压调节- 高速收集,最高可达100,000次/秒- 准确的体积法绝对计数功能,无需计数微- 优异的散射光分辨率,可检测小至100nm的颗粒具有流体反馈控制机制始终保持非常稳定的流速。在各种样品流速下具有出色的稳定性,可在不同的操作条件下提供一致的结果。新版NovoExpress,继续保留传统的优秀功能之外,提供了更多高级分析方法:- 细胞周期分析模块:除了之前的Watson Pragmati算法之外, 又新增了Dean Jet Fox(DJF)分析模型。为G1,S和G2 / M的定量拟合、以及其他参数(如CV's和G2 / G1 比率)的量化提供了更多选择, 尤其适合药物处理后的不规则周期分析。- 细胞增殖分析模型:自动分析细胞增殖,快速识别细胞分裂代数,并计算增殖指数,便于定量。- 热图数据显示:用户定义参数的颜色,方便快速查看并同时比较多个样品。 应用领域:- 癌症/免疫学- 药物及疗法开发- 病毒感染研究- 疫苗开发- 细胞生物学- 干细胞- 微生物学/水生生物学- 植物学性能指标:激光器数量5激光器配置UV/紫色/蓝色/黄色/红色荧光通道30工作原理:无与伦比的光电检测器硅光电倍增管 (SiPM) 是基于硅基底的固态半导体器件,具备光子能级灵敏度,动态范围为 7.2 个数量级,是一款具有光子计数功能的紧凑检测器。NovoCyte Penteon 设计中的创新光学器件包含 30 个独立的 SiPM,可收集并处理来自每个荧光通道的信号。出色的散射光分辨率,可检测小颗粒NovoCyte Penteon 散射光检测光学系统和信号处理电子器件经过优化,可以分辨粒径小至 0.1 µ m 的颗粒。凭借这种优异的分辨率,可轻松识别和分析血小板、细菌和各种亚微米颗粒。高重现性和稳定性NovoCyte Penteon 和 NovoCyte Quanteon 的液路系统专为提供高性能而设计。NovoCyte Penteon 和 NovoCyte Quanteon 拥有其他流式细胞仪无法比拟的液路一致性和稳定性。使用蠕动泵的其他仪器通常会受到液路脉动的影响,导致绝对细胞计数不一致和不准确。应用:凋亡分析细胞凋亡也称为细胞程序性死亡,是细胞调控自身死亡的过程,通过激活特定通路使细胞发生收缩、凝聚,并最终通过吞噬作用被清除。这与坏死细胞死亡形成鲜明对比,坏死细胞死亡时细胞失控死亡并裂解,可产生免疫反应异常激活等有害影响。因此,凋亡细胞以非常有序的方式死亡,可限制其对周围细胞和组织的破坏。多种方法可用于测定细胞死亡并区分其为凋亡还是坏死。NovoCyte 流式细胞仪具有自动补偿设置和宽荧光检测动态范围,可轻松对检测进行定量,无需调整 PMT 电压免疫表型分析免疫状态与疾病状态、治疗效率以及对疫苗等外部刺激的反应有关。免疫表型分析可快速识别候选细胞类型、亚类和功能。由于免疫细胞可能影响疫苗的免疫原性及其效能,因此监测多种免疫细胞群的频率以及特定细胞亚群(如单核细胞、NK 细胞、T 细胞和 B 细胞)的分化或活化状态至关重要。NovoCyte 流式细胞仪可同时定量分析多种白细胞,以便更好地了解患者的免疫状态并监测机体对传染病的免疫反应。细胞增殖细胞增殖是一种重要功能,是高度结构化的事件,如果不受控制,会导致疾病。我们可以通过绝对细胞计数或使用染料(例如 CFSE)测量增殖。当 CFSE 标记的细胞发生分裂时,染料在子细胞之间平均分配,随着染料的不断稀释,我们可以测量 CFSE 荧光随时间的损失。此外,还绘制染料的平均荧光强度 (MFI) 与细胞浓度随时间的变化曲线,以揭示两者之间的反比关系。这类分析方法通常用于观察 T 淋巴细胞活化的变化。图:使用 CFSE 测量 Jurkat T 细胞增殖。A) 使用 CFSE 标记 Jurkat T 细胞,并通过 NovoCyte 流式细胞仪分析细胞随时间的变化,以测定细胞分裂。每个峰值都对应于一个单独的时间点。B) 使用随细胞分裂产生的信号稀释,绘制绝对细胞计数与 CFSE 的平均荧光强度 (MFI) 随时间的变化曲线。细胞因子检测细胞因子是免疫细胞对病原体、自身免疫或治疗药物的激活反应所必需的小分子。细胞因子的信号传导可以调节基因调控、先天免疫反应和适应性免疫反应以及炎症。因此,测量细胞因子产生并确定细胞因子产生的来源对于深入了解免疫反应非常重要。基于微球的流式细胞术检测是测量细胞因子的高效方法,可以使用具有不同荧光强度的混合微球来测量单个样品中的多种可溶性分析物。细胞内蛋白质检测对细胞内蛋白质的检测和分析有助于细胞亚群和细胞过程的额外表征。为分析非细胞表面蛋白质,需要进行细胞固定和破膜。然而,许多磷酸特异性抗体与许多基于去垢剂的常用破膜方法(用于细胞内染色)不兼容。在确定磷酸特异性抗体的适宜固定和破膜方法时,需要特别注意。最常见的方法是用 1.5% 多聚甲醛固定,然后用 100% 甲醇破膜。虽然这种方法适用于多种抗体,但请注意,并非每种磷酸特异性抗体都适用。此外,在异质性样品中鉴定不同的细胞群,需要对表面蛋白连接的磷酸化蛋白进行染色。必须特别考虑这些表位对固定剂的敏感性,并采取相应预防措施,避免损害表位。因此,样品在固定前可能需要对特定的表面标记物进行染色细胞周期分析正常的人体细胞是含有恒定数量 DNA 的二倍体。在细胞分裂的过程中,DNA 合成导致总 DNA 含量翻倍,随后在有丝分裂后恢复正常的 DNA 含量。利用 NovoCyte 流式细胞仪,可以进行详细的细胞周期分析,了解肿瘤细胞分化、细胞转化以及细胞与化合物之间的相互作用。图:在 10 µ g/M MG132 或 500 µ g/M 5-FU 处理 16 小时后,使用 ACEA NovoCyte 流式细胞仪分析 A549 细胞的细胞周期分布。NovoExpress 内置的细胞周期分析模块中的图像显示了处于 G0/G1 期(绿色)、S 期(黄色)和 G2/M 期(蓝色)的细胞。与正常未处理的细胞相比,MG132 处理的细胞停滞在 G2/M 期,而 5-FU 处理的细胞停滞在 G0/G1 期。
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流式细胞周期分析相关的资讯

  • Nature Protocols:荧光显微镜确定单个细胞周期进程
    2015年2月3日讯 /生物谷BIOON/ --近日,著名国际期刊Nature Protocols在线刊登了来自美国NIH Tom Misteli研究小组的一项最新研究成果,他们提出了一个利用荧光显微镜确定单个细胞周期的实验方法。应用这种实验方法或可实现对群体中不同个体细胞周期的监测观察。   细胞周期进展是细胞最基本特征之一,传统上对细胞周期的研究主要依赖于群体分析,并通过周期相关特异性标记或者使用基因修饰系统的方法来确定,这使得对稳定的单细胞周期的确定变得非常困难。因此,研究人员提出一个应用高分辨率成像的荧光显微镜测量DNA含量来确定单个细胞周期的实验方案,这种方法是基于对DNA的染色,通过图像分析精确定量完整细胞核的荧光强度,并且能够与其他组化方法联合使用。Tom Misteli研究小组开发的双通道自动图像分析算法,结合商业软件或者开源软件能够导出对不同个体细胞周期的描述。这个实验方案适用于贴附细胞并且可使用几种不同的DNA染料。   综上所述,该文章提出了利用DNA染色结合荧光显微镜检测的实验方法来判断单个细胞的周期进程,或对精确研究群体中单个细胞的周期具有重要意义。
  • 重大发现! 细胞周期抑制蛋白p21新功能:免疫监视“侦察兵”与“计时器”
    为了对衰老细胞的分子特性进行进一步的理解,美国梅奥医学中心Jan M. van Deursen研究组与Hu Li研究组通过筛选不同的应激因素、细胞类型以及在哺乳动物体内寻找与衰老相关的增强子,希望能够鉴定出免疫系统识别衰老细胞的关键因素。这项工作发表在Science上题为p21 produces a bioactive secretome that places stressed cells under immunosurveillance。研究发现细胞周期蛋白依赖性激酶抑制因子p21除了经典的细胞周期阻滞的作用之外,会作为免疫监视“侦察兵”以及“计时器”的作用帮助机体建立内在的监察机制,促进衰老细胞的清除,确保机体的稳态。为了对衰老细胞在分子水平上进行更深入的了解,作者们希望鉴定衰老相关的超级增强子所控制的基因。在最初的筛选中,作者们使用了小鼠胚胎成纤维细胞这一体外系统,并且应用在三种不同的衰老诱导应激胁迫条件:γ-射线、过度复制以及癌基因诱导。作者们绘制了细胞过渡到衰老状态后超级增强子以及与这些超级增强子相关的转录激活基因,从中作者们找到了p21这个被调控的基因位点。p21是一个传统的细胞周期抑制因子,在筛选中发现该基因位点引发了作者们的兴趣, 这可能暗示了p21在衰老细胞中还具有其他的功能。为此,作者们在细胞中敲降了p21,发现衰老相关的基因表达中有三分之一是p21依赖的,因此作者们将这种表型称为p21激活的分泌表型(p21-activated secretory phenotype,PASP)。在受到影响的因子中,作者们将目光集中在Rb(Retinoblastoma protein)蛋白之上,因为在p21敲降后Rb在衰老细胞中缺失并且会降低衰老相关分泌表型的减弱。因此,p21是通过降低Rb的磷酸化对SASP产生影响。为了进一步地探究p21介导的Rb低磷酸化水平是如何激活衰老相关分泌表型基因的,作者们对调控不同衰老相关进转录因子以及不同衰老条件所产生的RNA-seq数据进行分析。作者们发现Rb会促进衰老细胞中这些关键转录因子的转录活性,从而建立起p21依赖的衰老相关分泌表型的产生。另外,作者们还发现p21所控制的转录程序是响应应激胁迫的第一道关,会在细胞周期阻滞的情况下开启机体的免疫监控。但是p21的这种免疫监控是如何开启的呢?作者们对衰老相关的分泌表型因子进行分析,发现小鼠胚胎成纤维细胞来源的p21依赖的分泌因子中包括Cxcl14,这是CXC家族趋化因子之一,会作为多种免疫细胞化学引诱剂发挥作用【1】。为了验证p21是否是由CXCL14开启机体的免疫监控的,作者们在实验系统中加入了CXCL14中和抗体,发现在加入后巨噬细胞被引诱后迁移的现象会消失。为了进一步在体内的系统证明这一观点,作者们对构建了标记的p21小鼠品系,p21过表达后肝脏细胞会出现显著的衰老特征,比如laminB1缺失以及HMGB1的核挤出等。但是随着时间的流逝,p21过表达的肝脏细胞数量显著降低,说明这些衰老的细胞会被清除。而再加入中和抗体后,衰老细胞的清除现象就会消失。那么p21所介导的衰老分泌表型因子的是否是特异的呢?为此作者们构建了p16以及p27的过表达品系。p16与p21相比是一个更为特异的细胞周期依赖性激酶抑制因子,只靶向G1-CDK。作者们发现p16也会出现显著的细胞周期抑制,但是并不能促进巨噬细胞的迁移。同样的,p27会作为在细胞终末分化的细胞周期发挥作用,而不似p21。因此,细胞周期阻滞与免疫监控是p21而非其他细胞周期依赖性抑制因子的特征。通过癌变诱导的应激胁迫,作者们证明了在癌基因诱发的应激胁迫中p21所介导的免疫监控作用也会发挥功效,从而作为应对胁迫的第一道防线保护机体的健康和稳态。但应激诱导的致癌点突变是不可修复的,但细胞一般来说遇到的很多应激胁迫都是短暂的或者是可以修复的。那么p21依赖的衰老分泌表型是否可以对可逆的应激胁迫进行响应呢?作者们构建了慢病毒载体的p21小鼠品系,在阿霉素(Dox)作用的情况下会产生符合p21过表达的表型,而在去除阿霉素后p21的水平会逐渐恢复正常,作者们发现p21恢复正常水平后,p21依赖的衰老分泌表型缓解下来,巨噬细胞会从应激胁迫的上释放,细胞的免疫监控状态停止。总的来说,该工作鉴定发现了经典的细胞周期蛋白依赖性激酶p21在应激状态下作用“侦察兵”发挥免疫监控作用(图1),通过促进细胞释放趋化因子CXCL14等招募巨噬细胞,清除机体中危险的存在,同时又具有生物内在“计时器”功能,在应激胁迫撤出的情况下促进衰老分泌表型的缓解,从而解除多细胞内的警报,促使机体恢复正常状况。同期刊发观点文章对该文章进行介绍题为Clearing stressed cells,介绍了该工作中鉴定发现p21不仅对于衰老细胞的周期阻滞有关,还会早期阶段对受到胁迫的细胞进行免疫监控,清除受到胁迫的细胞。在细胞对内在环境进行修复,促使p21恢复正常水平后,可以使得巨噬细胞解离。但是应激胁迫造成的威胁超过细胞的修复能力后,细胞依赖于p21所释放的CXCL14等在内的趋化因子会招募巨噬细胞,巨噬细胞激活后招募T细胞,从而维护多细胞内环境的稳态。原文链接:https://doi.org/10.1126/science.abb3420
  • 质谱流式细胞术及其在精准医学中研究进展
    质谱流式细胞术及其在精准医学中研究进展张浩1,2,3, 韩国军1,2,31北京大学跨学部生物医学工程系;2北京大学口腔医院;3 北京大学医学部医学技术研究院。质谱流式细胞术(Mass Cytometry)是近年来应用最为广泛的单细胞技术之一种。其将流式细胞技术与质谱分析技术结合在一起,用金属同位素代替荧光标记特异性抗体或探针,并利用质谱来定量同位素标签,可以在单细胞水平完成多种生物标志物的检测分析,包括核酸、蛋白质及其它小分子。其具有高通量、高灵敏度和高稳定性等优点,尤其适合于肿瘤、免疫、血液、药物和遗传学等学科的研究。当前新冠病毒COVID-19对人体免疫系统造成严重侵害,质谱流式技术能够更深入、全面的分析人体免疫系统的各种细胞亚型及其比例的变化,并预测临床病程的变化趋势,对于早期诊断、治疗与病理研究具有重要意义。 (一) 质谱流式细胞术发展历史图 1美国斯坦福大学医学院Garry Nolan 实验室中三台质谱流式仪器: CyTOF 1, CyTOF 2,CyTOF 3 (Helios)和BD公司荧光流式细胞仪LSR II。[1]质谱流式细胞术从最初的分析方法学概念到单细胞仪器装置、最终在基础生物学与临床医学中取得重要的应用,经过近二十年的发展历程。图1为2015年美国斯坦福大学医学院免疫学与微生物学系Garry Nolan教授实验室中三台不同型号CyTOF质谱流式仪与BD公司荧光流式细胞仪同时使用的照片。回顾质谱流式细胞术的发展历史,有三位重要的科学家作出了杰出的贡献。如图2中所示,首先2002年清华大学张新荣教授在学术期刊Analytical Chemistry中第一次提出元素标记策略用于电感耦合等离子体质谱的生物大分子检测的方法学研究[2];2009年加拿大多伦多大学的Scott Tanner教授在学术期刊Analytical Chemistry中首次发布质谱流式细胞仪(Cytometry for Time of Flight,CyTOF)的研究工作[3],并成立DVS Sciences公司将传统流式细胞术与电感耦合等离子体质谱相结合,推出了首台商用质谱流式分析仪器。2011年斯坦福大学Garry Nolan教授首次将质谱流式技术成功应用于临床血癌免疫性疾病的单细胞的表型与磷酸化蛋白信号通路研究[4],开创了质谱流式医学应用的新篇章。2014年,DVS Sciences公司和质谱流式技术被美国Fluidigm公司收购,随后分别于与2015年和2017年陆续推出了Helios质谱流式系统和Hyperion组织成像系统以及700多种相关抗体和预设计标记试剂盒。目前为止,全球已经安装超过200台质谱流式细胞仪,中国拥有30台以上。并且,已经有50多个临床试验使用了质谱流式细胞术,这表明高通量、高灵敏、高稳定的质谱流式时代已经来临。图2 质谱流式细胞术三位主要奠基人:图A左一为清华大学张新荣教授;图A右一为加拿大多伦多大学Scott Tanner教授; 图B第一排右一为美国斯坦福大学Garry Nolan。(二) 质谱流式细胞术原理质谱流式细胞术主要工作原理是通过重金属同位素标记抗体或探针,然后识别细胞表面或内部信号,被标记的细胞以细胞悬液形式进入雾化器,随后样品在等离子体内发生汽化,产生离子云、离子在四级杆内根据质荷比进行筛选,然后在时间飞行器中通过已知强度的电场加速后到达检测器,而其到达检测器的飞行时间与离子质量有关。最后将原子质量谱的数据转换为细胞表面或内部的信号分子数据,并通过专业计算机分析软件对获得的数据进行降维处理分析,从而得到细胞外部表型和内部信号网络的数据结果。图3 质谱流式细胞术金属稳定同位素标记探针。包括标记单克隆抗体分子的稀土同位素;标记细胞编码的贵金属同位素;标记细胞周期的卤素[1]。北京大学韩国军教授首次建立了48种稳定同位素单克隆抗体统一标记策如图3所示,并定量分析了镧系、钇、铟、钯同位素间的CyTOF质谱干扰。系统性的建立了标准方法用于同位素标记抗体定量分析、抗体活性与选择性验证、以及抗体细胞染色浓度优化等,被多个国际质谱流式实验室作为同位素抗体标记标准手册使用。与传统流式技术相比,质谱流式细胞术主要有以下优势:① 前者使用荧光基团偶联抗体或分子,后者主要通过金属同位素进行标记,因为细胞中不含或很少含有这些金属同位素,因此背景信号较低,检测数据可靠性较高;② 传统荧光流式采用激光器和光电倍增管作为检测手段,最多可同时检测通道数不足20个,而质谱流式细胞术使用ICP-MS作为检测手段,不仅提高了检测通道数,可同时检测100个左右参数,而且避免了通道信号之间的串色干扰,无补偿或补偿非常小,使方案设计更加容易。③ 除可以在单细胞水平进行自身多参数分析以外,还可以检测分析一些金属治疗药物的分布及代谢情况,比如顺铂类化疗药物等。但质谱流式细胞术当前也存在一些问题,比如样本采集速度慢,每秒最多约1000个事件;测量不同样本之间需要程序清洁,导致每个样本平均测样时间延长;由于样本被气化,所以无法进行前向散射和侧向散射测量,也不能分选回收细胞进行后续实验等。(三)质谱流式细胞术的应用3.1 细胞表型鉴定与信号通路检测质谱流式细胞术非常适合对复杂的细胞表型进行深层次分析,可以区分在疾病发展过程中发挥不同作用的相似细胞,这对疾病的个体化治疗具有重要意义。Su等人通过对结直肠癌患者血液中的T细胞群进行质谱流式分析,展示了患者个体及不同患者之间 T 细胞亚群的表型多样性[5]。此外,Lelieveldt等用HSNE进行数据分析,在免疫细胞中发现了稀有细胞群[6]。分析细胞因子可以为研究免疫激活状态提供新的视角。Vendrame 等人利用 CyTOF评估细胞因子对自然杀伤 (NK) 细胞的影响,发现白介素 (IL)-12/IL-15/ IL-18刺激可显著增加NK细胞中γ干扰素 (IFN‐γ)的表达[7]。Doyle等对丙型肝炎病毒(HCV)感染患者的肝脏和外周血中的浆细胞样树突状细胞(pDCs)进行了研究,证明肝脏pDC具有多功能性,能够在慢性HCV感染期间产生大量的IFN-γ 和其他免疫调节因子[8]。随着检测细胞因子的报道不断增多,CyTOF将可能成为免疫细胞功能研究中不可或缺的工具。细胞受外界刺激后,细胞内信号网络会做出相应反应。使用靶向磷酸化蛋白的金属螯合抗体,CyTOF能够检测单个细胞内的信号通路。Shinko等人为临床血样提供了磷酸化信号蛋白染色的优化方案[9]。厦门大学周大旺教授团队应用 CyTOF质谱流式细胞仪发现了Hippo信号通路中转录共激活因子TAZ在调节 CD4+初始T细胞分化为Th17细胞和Treg细胞的过程中发挥着关键调控作用及其重要机理[10]。 3.2细胞周期鉴定、RNA和蛋白质的共同检测细胞周期改变是肿瘤进展、生物发育和免疫调节的重要方面。Behbehani 等人开发了一种新的CyTOF方法来描绘细胞周期阶段,分别使用IdU、磷酸化视网膜母细胞瘤抗体、细胞周期蛋白 B1抗体、细胞周期蛋白 A 抗体和磷酸化组蛋白H3抗体来标记S、G0、G1、G2、和 M 期细胞[11]。并利用这种细胞周期鉴定方法,研究展示了介导急性髓性白血病化疗敏感性的细胞周期差异[12]。为了能够在单细胞分辨率下同时检测 RNA 和蛋白质,Frei 等人开发了 RNA 邻近连接技术 (PLAYR)[13]。PLAYR包括杂交、连接、滚环扩增和检测四个阶段。针对目标RNA设计两个相邻区段的探针,与目标RNA结合后再与Backbone和Insert两个探针进行杂交,随后Backbone和Insert探针连接成一个环,做为后续滚环扩增的模板,与带有金属标签的探针杂交后就可以扩增并检测了。PLAYR的优势在于可以同时兼容蛋白检测,在实验过程中,可以先用抗体对胞内外蛋白进行标记,然后在用PLAYR流程对RNA进行原位标记和扩增。我们可以根据表面Marker对细胞进行亚群分析,深入研究每个亚群中信号通路、转录因子的激活及其相关基因的表达。并且利用PLAYR监测脂多糖刺激后PBMCs中8个细胞因子mRNA和18个蛋白表位的变化,揭示了每个细胞的功能能力与其蛋白标记物表达之间的相关性。3.3 质谱流式细胞术成像Geisen 等人使用 CyTOF 对组织样本进行成像以获得蛋白质空间组学[14]。他们提出的IMC (Imaging Mass Cytometry)技术使用分辨率为 1 μm 的激光光斑进行烧蚀、雾化、电离,并通过惰性气流传送到质谱检测器。IMC 被认为是具有里程碑意义的发展,因为它在亚细胞分辨率下将细胞间相互作用和的空间信息联系在一起,并能同时分析多达50种参数。自推出以来,IMC 正迅速被应用于各个研究领域。Damond 等人使用 IMC 对4例非糖尿病患者、4例首发1型糖尿病患者和4例长期1型糖尿病患者的胰岛进行研究,描述了人类1型糖尿病的进展,并发现在发病之前β胰岛素细胞表型已经发生改变[15]。另一类元素标记的单细胞成像技术是利用二次离子质谱SIMS(Secondary Imaging Mass Spectrometry),图4为北京大学韩国军教授利用NanoSIMS 50L质谱对Hela单细胞核中新生成的DNA与RNA的时空分析[16]。图4 基于二次离子质谱的高分辨Hela细胞核成像技术与人工智能机器学习数据分析。3.4 新冠肺炎检测及治疗 Silvin等人对COVID-19 患者外周血进行单细胞CyTOF及RNA测序,发现血浆内钙结合蛋白水平和非典型单核细胞减少可以鉴别严重的COVID-19患者[17]。Schrepping等人对全血和外周血单个核细胞进行RNA测序和单细胞蛋白质组学分析,揭示了SARS-CoV-2感染后免疫系统的反应[18]。而Rendeiro等人利用质谱流式细胞术进行空间成像,研究包括SARS-CoV-2 感染在内的人类急性肺损伤的细胞组成和空间结构。从而使我们能够从结构、免疫学和临床角度提出生物学上可解释的肺病理图谱,为理解COVID-19和一般的肺损伤病理学提供了重要的基础[19]。(四)总结质谱流式细胞术相较传统荧光流式细胞技术具有可以同时检测更多参数不需补偿、方案设计简单、灵敏度高等优点。其多参数检测的特征尤其适合对细胞表型、细胞因子、信号通路等进行深层次分析,适用于肿瘤、免疫系统疾病、传染病、血液病、药物临床试验、预后评估等方面研究。但质谱流式细胞术也存在采样较慢、清洁费时、成本较高等问题,因此还需研究人员根据自己的实验目的及需求进行选择。参考文献:1. Han GJ, Spitzer MH, Bendall SC, et al. Metal‐isotope‐tagged monoclonal antibodies for high‐dimensional mass cytometry[J]. Nat Protoc, 2018 13(10):2121-2148. DOI: 10.1038/s41596-018-0016-7.2. C. Zhang, Z. Y. Zhang, B. B. Yu, J. J. Shi, X. R. Zhang. Application fo the biological conjugate between antibody and colloid Au nanoparticle as analyte to inductively coupled plasma spectrometry. Anal.Chem. 20023. Bandura DR, Baranov VI, Ornatsky OI, et al. Mass cytometry: technique for real time single cell multitarget immunoassay based on inductively coupled plasma time - of - flight masss pectrometry[J]. Anal Chem, 2009 81(16):6813-22. DOI: 10.1021/ac901049w.4. Bendall SC, Simonds EF, Qiu P, et al. Single‐cell mass cytometry of differential immune and drug responses across a human hematopoietic continuum[J]. Science, 2011 332(6030):687-96. DOI: 10.1126/science.1198704.5. Di J, Liu M, Fan Y, et al. Phenotype molding of T cells in colorectal cancer by single‐cell analysis[J]. Int J Cancer. 2020 146(8):2281‐2295. DOI:10.1002/ijc.32856.6. van Unen V, Hollt T, Pezzotti N, et al. Visual analysis of mass cytometry data by hierarchical stochastic neighbour embedding reveals rare cell types[J]. Nat Commun. 2017 8(1):1740. DOI:10.1038/s41467-017-01689-9.7. Vendrame E, Fukuyama J, Strauss‐Albee DM, et al. Mass cytometry analytical approaches reveal cytokine‐induced changes in natural killer cells[J]. Cytometry B Clin Cytom. 2017 92(1):57‐67. DOI:10.1002/cyto.b.21500.8. Doyle EH, Rahman A, Aloman C, et al. Individual liver plasmacytoid dendritic cells are capable of producing IFNalpha and multiple additional cytokines during chronic HCV infection[J]. PLoS Pathog. 2019 15(7):e1007935. DOI:10.1371/journal.ppat.1007935.9. Shinko D, Ashhurst TM, McGuire HM, et al. Staining of phosphorylated signalling markers protocol for mass cytometry[J]. Methods Mol Biol. 2019 1989:139‐146. DOI:10.1007/978-1-4939-9454-0_10.10. Geng J, Yu S, Zhao H, et al. The transcriptional coactivator TAZ regulates reciprocal differentiation of TH17 cells and Treg cells[J]. Nat Immunol, 2017 18(7):800-812. DOI: 10.1038/ni.3748. 11. Behbehani GK, Bendall SC, Clutter MR, et al. Single‐cell mass cytometry adapted to measurements of the cell cycle[J]. Cytometry A. 2012 81(7):552‐566. DOI:10.1002/cyto.a.22075.12. Behbehani GK, Samusik N, Bjornson ZB, et al. Mass cytometric functional profiling of acute myeloid leukemia defines cell‐cycle and immunophenotypic properties that correlate with known responses to therapy[J]. Cancer Discov. 2015 5(9):988‐1003. DOI:10.1158/2159-8290.CD-15-0298.13. Frei AP, Bava FA, Zunder ER, et al. Highly multiplexed simultaneous detection of RNAs and proteins in single cells[J]. Nat Methods. 2016 13(3):269‐275. DOI:10.1038/nmeth.3742. 14. Giesen C, Wang HA, Schapiro D, et al. Highly multiplexed imaging of tumor tissues with subcellular resolution by mass cytometry[J]. Nat Methods. 2014 11(4):417‐422. DOI:10.1038/nmeth.2869.15. Damond N, Engler S, Zanotelli VRT, et al. A map of human type 1 diabetes progression by imaging mass cytometry[J]. Cell Metab. 2019 29(3):755‐768.e5. DOI:10.1016/j.cmet.2018.11.014.16. Coskun. A. F., Guojun Han, Ganesh S. et al. Nanoscopic subcellular imaging enabled by ion beam tomography, Nature Communications, 2021, 12(789)17. Silvin A, Chapuis N, Dunsmore G, et al. Elevated Calprotectin and Abnormal Myeloid Cell Subsets Discriminate Severe from Mild COVID-19[J]. Cell, 2020 182(6):1401-1418.e18. DOI: 10.1016/j.cell.2020.08.002.18. Schulte-Schrepping J, Reusch N, Paclik D, et al. Severe COVID-19 Is Marked by a Dysregulated Myeloid Cell Compartment[J]. Cell, 2020 182(6):1419-1440.e23. DOI:10.1016/j.cell.2020.08.001. 19. Rendeiro AF, Ravichandran H, Bram Y, et al. The spatial landscape of lung pathology during COVID-19 progression[J]. Nature, 2021 593(7860):564-569. DOI:10.1038/s41586-021-03475-6. 【作者简介】张浩 博士 2020级北京大学口腔医学技术专业科研型博士,导师韩国军教授。硕士就读于山东大学口腔医院(导师刘少华教授),从事血管瘤临床治疗及泡沫硬化剂的改良研究,发表SCI论文4篇。目前师从韩国军教授,主要从事口腔鳞癌单细胞质谱研究及质谱病理诊断新方法研究。韩国军 研究员北京大学跨学部生物医学工程系研究员、博士生导师,北京大学口腔医院双聘博士生导师。2013年毕业于清华大学化学系(导师张新荣教授),2013至2020年在美国斯坦福大学医学院Mass Cytometry创始人Garry Nolan课题组从事新一代质谱流式相关技术与临床医学应用研究。曾获教育部自然科学一等奖,并在Nature Communications、Nature Protocols、Cell Reports、Angew Chem、Anal Chem、Cytometry等发表论文20余篇。目前主要从事质谱新技术在临床医学中应用研究,与北京大学口腔医院、北京大学第三医院、北京大学第一医院开展单细胞质谱流式临床精准医学研究。点击查看流式细胞仪专场Webinar预告(点击报名)专家约稿招募:若您有生命科学相关研究、技术、应用、经验等愿意以约稿形式共享,欢迎邮件投稿或沟通邮箱:liuld@instrument.com.cn微信/电话:13683372576扫码关注【3i生仪社】,解锁生命科学行业资讯!

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    [b][font=宋体][font=宋体]细胞周期[/font][font=Calibri]cell cycle [/font][/font][/b][font=宋体]是指从一次细胞分裂形成子细胞开始到下一次细胞分裂形成子细胞为止所经历的过程,它反映了细胞增殖的速度。在临床上,有很多研究证明,细胞周期分析对人肿瘤的诊断预后具有很高的价值。[/font][font=宋体] [/font][font=宋体][font=宋体]一个完整的细胞周期包含间期和分裂期([/font][font=Calibri]M[/font][font=宋体]期)两个阶段,间期又分为[/font][font=Calibri]DNA[/font][font=宋体]合成前期([/font][font=Calibri]G1[/font][font=宋体]期)、[/font][font=Calibri]DNA[/font][font=宋体]合成期([/font][font=Calibri]S[/font][font=宋体]期)和[/font][font=Calibri]DNA[/font][font=宋体]合成后期([/font][font=Calibri]G2[/font][font=宋体]期),处于不同时期的细胞的[/font][font=Calibri]DNA [/font][font=宋体]含量存在差异。一般认为,[/font][font=Calibri]G 1 [/font][font=宋体]期细胞具有增殖活性,参与细胞周期循环,是二倍体细胞;[/font][font=Calibri]S [/font][font=宋体]期细胞,[/font][font=Calibri]DNA [/font][font=宋体]含量逐渐增加,从二倍体变成四倍体,随后进入 [/font][font=Calibri]G 2 [/font][font=宋体]期,最终进入 [/font][font=Calibri]M [/font][font=宋体]期。检测细胞周期常用的方法是检测[/font][font=Calibri]DNA[/font][font=宋体]含量,可以选择能与[/font][font=Calibri]DNA[/font][font=宋体]结合的荧光染料(如[/font][font=Calibri]PI[/font][font=宋体]等),再根据细胞各个时期[/font][font=Calibri]DNA[/font][font=宋体]含量不同从而荧光强度不同的方法,分析各个阶段的细胞比例。[/font][/font][font=宋体] [/font][font=宋体] [/font][b][font=宋体][font=宋体]流式细胞仪[/font][font=Calibri]PI[/font][font=宋体]染色法检测细胞周期的原理[/font][/font][/b][font=宋体] [/font][font=宋体][font=宋体]由于细胞周期各时相的[/font][font=Calibri]DNA[/font][font=宋体]不同[/font][font=Calibri],[/font][font=宋体]通常正常细胞的[/font][font=Calibri]G1/G0[/font][font=宋体]期具有二倍体细胞的[/font][font=Calibri]DNA[/font][font=宋体]含量[/font][font=Calibri](2N),[/font][font=宋体]而[/font][font=Calibri]G2/M[/font][font=宋体]期具有四倍体细胞[/font][font=Calibri]DNA[/font][font=宋体]含量[/font][font=Calibri](4N),[/font][font=宋体]而[/font][font=Calibri]S[/font][font=宋体]期的[/font][font=Calibri]DNA [/font][font=宋体]含量介于二倍体和四倍体之间。[/font][/font][font=宋体] [/font][font=宋体][font=Calibri]PI[/font][font=宋体](碘化丙啶)为插入性核酸荧光染料,能选择性嵌入核酸[/font][font=Calibri]DNA[/font][font=宋体]和[/font][font=Calibri]RNA[/font][font=宋体]双螺旋的碱基之间与之结合,结合量与[/font][font=Calibri]DNA[/font][font=宋体]的含量成正比关系,其荧光强度直接能反映细胞内[/font][font=Calibri]DNA[/font][font=宋体]含量。[/font][/font][font=宋体] [/font][font=宋体][font=宋体]因此[/font][font=Calibri],[/font][font=宋体]通过流式细胞仪[/font][font=Calibri]PI[/font][font=宋体]染色法对细胞内[/font][font=Calibri]DNA[/font][font=宋体]含量进行检测时[/font][font=Calibri],[/font][font=宋体]可以将细胞周期各时相区分为[/font][font=Calibri]G1/G0 [/font][font=宋体]期[/font][font=Calibri],S [/font][font=宋体]期和[/font][font=Calibri]G2/M [/font][font=宋体]期[/font][font=Calibri],[/font][font=宋体]获得的流式直方图对应的各细胞周期可通过特殊软件计算各时相的细胞百分率。[/font][/font][font=宋体] [/font][font=宋体][font=宋体]通过定量测定[/font] [font=Calibri]DNA [/font][font=宋体]含量来分析细胞周期是流式细胞术最早的应用之一。[/font][/font][font=宋体] [/font][font=宋体][font=宋体]流式细胞周期([/font][font=Calibri]cell cycle[/font][font=宋体])检测结果分析常用的流式细胞术分析细胞周期的方法是依据细胞[/font][font=Calibri]DNA[/font][font=宋体]含量(横坐标)来分析的:[/font][font=Calibri]G0[/font][font=宋体]期:静止期,有丝分裂完成后,脱离细胞周期暂时停止分裂的一个阶段,胞内[/font][font=Calibri]DNA[/font][font=宋体]含量保持二倍体;[/font][font=Calibri]G1[/font][font=宋体]期:[/font][font=Calibri]DNA[/font][font=宋体]合成前期,从有丝分裂到[/font][font=Calibri]DNA[/font][font=宋体]复制前的一段时期,此期主要合成[/font][font=Calibri]RNA[/font][font=宋体]和核糖体,胞内[/font][font=Calibri]DNA[/font][font=宋体]含量保持二倍体;[/font][font=Calibri]S[/font][font=宋体]期:[/font][font=Calibri]DNA[/font][font=宋体]合成期,在此期,合成[/font][font=Calibri]DNA[/font][font=宋体]及组蛋白,胞内[/font][font=Calibri]DNA[/font][font=宋体]含量介于[/font][font=Calibri]G1[/font][font=宋体]期与[/font][font=Calibri]G2[/font][font=宋体]期之间;[/font][font=Calibri]G2[/font][font=宋体]期:[/font][font=Calibri]DNA[/font][font=宋体]合成后期,是有丝分裂的准备期,合成[/font][font=Calibri]RNA[/font][font=宋体]及蛋白质,[/font][font=Calibri]DNA[/font][font=宋体]合成终止,胞内[/font][font=Calibri]DNA[/font][font=宋体]含量为四倍体;[/font][font=Calibri]M[/font][font=宋体]期:细胞分裂期,胞内[/font][font=Calibri]DNA[/font][font=宋体]含量为四倍体;[/font][/font][font=宋体] [/font][b][font=宋体]流式细胞检测正常范围[/font][/b][font=宋体]流式细胞检测的正常范围通常依赖于被检测细胞或生物粒子的类型以及所测参数的性质。一般而言,正常的细胞数量、细胞大小、细胞形态、细胞内物质的浓度和分布等参数都在一定的范围内。这些正常范围通常是通过对比大量健康个体或样本的流式细胞检测结果而得出的。例如,正常血细胞的计数和比例,各种免疫细胞的分布,以及细胞内的荧光强度等,都有相应的正常范围。[/font][font=宋体] [/font][font=宋体][font=宋体]义翘神州提供[url=https://cn.sinobiological.com/services/flow-cytometry-service][b]流式细胞检测技术服务[/b][/url],同时还提供完善的[url=https://cn.sinobiological.com/services/platform/facs-b-cell-sorting][b]流式单[/b][/url][/font][font=Calibri][url=https://cn.sinobiological.com/services/platform/facs-b-cell-sorting][b]B[/b][/url][/font][font=宋体][url=https://cn.sinobiological.com/services/platform/facs-b-cell-sorting][b]细胞分选平台[/b][/url],详情关注:[/font][font=Calibri]https://cn.sinobiological.com/services/flow-cytometry-service[/font][/font][font=宋体][font=Calibri]https://cn.sinobiological.com/services/platform/facs-b-cell-sorting[/font][/font][font=宋体] [/font][b][font=宋体][font=宋体]义翘神州:蛋白与抗体的专业引领者,欢迎通过百度搜索[/font][font=宋体]“义翘神州”与我们取得联系。[/font][/font][/b]

  • 荧光显微镜及流式表征西达本胺诱导细胞凋亡并阻滞细胞周期

    荧光显微镜及流式表征西达本胺诱导细胞凋亡并阻滞细胞周期

    荧光显微镜及流式表征西达本胺诱导细胞凋亡并阻滞细胞周期流式细胞术检测到明显的细胞凋亡,随着加药浓度的升高,细胞凋亡数量增多,早期凋亡细胞、晚期凋亡细胞和坏死细胞 的 数 量 都 随 之 上 升 (图 a).测 得 实 验 组 凋 亡 率 分 别 为 12.32% ±0.84% (P 0.05),15.63%±0.91%(P0.001),与对照组相比,有统计学意义(图b).与此同时通过 EdU 实验检测(图c)其细胞周期的变化,随着加药浓度的增高,Hoechst蓝色荧光染色细胞数目减少,即活细胞数减少,药物对细胞杀伤作用显著 EdU 绿色荧光染色细胞数减少,即进入 DNA 复制期的细胞数量减少.表明西达本胺可以明显促进 HCT-15细胞凋亡、抑制其增殖且阻滞细胞周期.[img]https://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2023/06/202306302205203559_379_5389809_3.png[/img]

流式细胞周期分析相关的耗材

  • 流式细胞仪配套试剂盒
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