肿瘤细胞球

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肿瘤细胞球相关的耗材

  • 康宁96孔球形板-3D细胞培养板
    3D细胞培养为细胞提供一个更加接近体内生存条件的微环境,能够更好地模拟生理状态,从而获得与体内实验更加一致的实验结果。康宁超低吸附表面球形板,为您提供了一种结果可靠、简便易行、兼容高通量筛选的3D培养方案。产品特性:超低吸附表面,细胞自发形成3D细胞球;独特球形底设计,在每个孔中间形成单个大小均一的细胞球;操作极其简便,无需特殊实验技巧和设备;黑色底透,在同一块板完成培养、观察和检测步骤。 采用康宁球形板,您可以:模拟体内细胞的3D结构,模拟组织内部微环境;筛选更具有潜力的抗肿瘤药物;研究免疫细胞浸润与活化维持,筛选高效杀伤实体瘤的CAR-T细胞;研究干细胞的分化,培养类器官;建立共培养模型,研究细胞-细胞间的相互作用。?订购信息
  • 海狸TCT表面处理细胞培养板40106六孔板
    TCT细胞培养板 组织培养处理(Tissue Culture Treatment, TCT)表面细胞培养板是传统二维平面细胞培养实验室的常规工具,也是海狸研发的各种具有特殊功能性表面的特种细胞培养板的基础。其广泛应用于生命科学基础研究、肿瘤研究、病毒检测与诊断,基因工程及疫苗研发生产等领域。产品名称编号规格包装TCT Cell Culture 6-Well Plate401061/pk50/CaseTCT Cell Culture 12-Well Plate401121/Pk50/CaseTCT Cell Culture 24-Well Plate401241/pk50/CaseTCT Cell Culture 48Well Plate401481/pk50/CaseTCT Cell Culture 96-Well Plate401961/pk65/Case产品质量稳定,批次间无差异,同一培养板各孔差异小表面稳定性好,细胞贴附力强,更适合细胞生长γ射线灭菌,无毒性、无热源、无Human DNA、无DNase、无RNase人性化设计,方便易用 细胞培养表面为纯镜面,无明显划痕和瑕疵,为客户获得高质量的细胞培养数据提供坚实的保障 左图:大鼠骨髓间充质干细胞(SD MSC)在BeaverBio™ 细胞培养表面的生长状况 右图:人脐静脉内皮细胞(HUVEC)在BeaverBio™ 细胞培养表面的生长状况左图:人主动脉血管平滑肌细胞(T/G HA-VSMC)在BeaverBio™ 细胞培养表面的生长状况
  • 细胞小室培养板
    细胞小室运用选择指南应用细胞膜孔径ADME(化合物穿过肠上皮细胞屏障转运和渗透)Caco-2、MDCK0.4 μm共培养和细胞分化、细胞成像原代细胞、肿瘤干细胞0.4 μm、1.0 μm大分子或病毒转运、分泌1.0 μm、3.0 μm细胞迁移和侵袭(血管生成)、细胞趋化作用(迁移)或内皮迁移 轴突增生、共培养内皮细胞、白细胞 神经元3.0 μm细胞迁移和侵袭淋巴细胞、巨噬细胞3.0 μm、5.0 μm肿瘤细胞迁移和侵袭 血细胞趋化作用或经内皮细胞迁移、共培养肿瘤衍生细胞、白细胞 肿瘤干细胞、MSCs8.0 μm细胞小室参数规格配套小室数量(个/块板)小室直径(mm)每孔容积(ml)小室内体积(ml)小室膜生长面积(cm² )6孔板6242.61.54.6712孔板12121.50.51.1224孔板126.50.60.10.33100mm皿17513944膜孔径(um)膜密度(孔/cm² )0.41x1081.02x1073.02x1065.04x1058.01x105PET(聚酯)膜带盖产品编号 TC处理产品编号 未TC处理产品名称孔径(μm)膜透明度包装规格个/盒个/箱7231217231316孔细胞小室0.4不透明66072412172413112孔细胞小室0.4不透明1212072512172513124孔细胞小室0.4不透明121207234217234316孔细胞小室1全透明66072442172443112孔细胞小室1全透明1212072542172543124孔细胞小室1全透明121207230217230316孔细胞小室3半透明66072402172403112孔细胞小室3半透明1212072502172503124孔细胞小室3半透明121207233217233316孔细胞小室8全透明66072432172433112孔细胞小室8全透明1212072532172533124孔细胞小室8全透明12120PC(聚碳酸酯)膜带盖产品编号 TC处理产品编号 未TC处理产品名称孔径(μm)膜透明度包装规格个/盒个/箱7231017231116孔细胞小室0.4不透明660724101724111 12孔细胞小室0.4不透明1212072510172511124孔细胞小室0.4不透明121207230017230116孔细胞小室3半透明66072400172401112孔细胞小室3半透明1212072500172501124孔细胞小室3半透明1212072420172421112孔细胞小室5半透明1212072520172521124孔细胞小室5半透明121207233017233116孔细胞小室8半透明66072430172431112孔细胞小室8半透明1212072530172531124孔细胞小室8半透明12120PC(聚碳酸酯)膜(TC处理)产品编号产品名称孔径(μm)膜透明度包装规格个/盒个/箱726001100mm 细胞小室 PC(聚碳酸酯)膜 带盖 TC3半透明110细胞小室在细胞实验中很常用,如:共培养实验、趋化实验、细胞迁移实验、细胞侵袭以及药物转运。其中,通透性支持物可以有效改善极性细胞的培养,因为这些支持物允许细胞从其基底面和顶面分泌和吸收分子,从而以更为自然的方式进行代谢,最大程度的模拟体内环境以培养某些特殊的细胞系。聚碳酸酯(PC)膜孔密度较高,允许通过膜完成更多交换,而且具有极佳的细胞粘附特性,所以适用于转运研究和其他需要实现最佳细胞生长的应用。 另外PC膜也非常适用于屏障分析。 在较长时段内相比其他膜材料,具有更高、更持续且更稳定的跨上皮电阻 (TEER) 值。PC膜无需基质包被即可培养大多数类型细胞。 PET膜PET膜孔密度较低,具有更好的光学清晰度,有利于显微镜细胞观察以及细胞成像。创新的边缘设计,加样方便丰富的配套多孔板选择:6孔、12孔、24孔PC膜:低吸附率,减少小分子蛋白和其他化合物的损失PET膜透明度极佳,具有更好的光学清晰度透明的PET膜方便观察细胞状态PC膜不易撕破或卷曲,且取出小室时操作方便与大部分固定与染色时用的溶剂相容使用指南使用时先将培养液加入到多孔板的孔中,将嵌套放入,再将含有细胞的培养液加入嵌套内部;预先平衡:培养液加入到多孔板中,再加入嵌套,然后放入培养箱中培养至少一个小时,也可以过夜;定期检查培养液体积,并按需补加新鲜培养基。但细胞层可以用基本细胞学方法在嵌套中直接固定和染色。注避免使用可以溶解PC膜的溶剂。在嵌套中直接固定和染色细胞,可以用解剖刀将膜割下做长期保存。注意事项在通透性支持物(膜)上生长的细胞的贴附对于起始接种密度很敏感,所以初次使用应接种不同密度保证最佳生长; 培养过程中通过上层和孔之间的空隙取液、加液时一定要小心、缓慢操作、避免膜的损坏; 在培养细胞之前将通透性支持物在培养基中孵育可以改善细胞的贴附和分布。 下层培养液和小室间常会有气泡产生,一旦产生气泡,下层培养液的趋化作用就减弱甚至消失,所以在接种细胞的时候要特别留心,若产生气泡,要将小室提起,去除气泡,在将小室放进培养板。

肿瘤细胞球相关的仪器

  • 赛多利斯Incucyte 实时活细胞分析系统,可有效捕获培养箱中细胞的变化。系统支持高分辨率荧光和明场图像采集,能够实现数小时、数天或数周内数据的实时记录。系统使用灵活,从增殖分析到肿瘤球免疫杀伤检测,均可协助用户实时观察和定量复杂的生物变化。集成式软件可以简化数据分析,快速获得结果,并生成可供发表的图表和绘图。 Incucyte SX5 实时活细胞分析仪更多色彩,更多发现,更多可能 配备了专利光学组件的全新 Incucyte SX5可以更加深入地分析每个样本的信息。专为活细胞分析设计的颜色多达 5 种,功能更强大。该仪器具有更多通道,可以使用更多试剂。采用专门定制的软件,适用于更多应用领域。帮助您深入了解更多细胞生理学的相关信息。为活细胞分析赋能从每个样本获取更多信息,探索更多应用。支持多达五个不同的荧光通道( 同时可使用三个) 进行长时程活细胞实验。加速实现研究目标通过一个平台,即可完成复杂的免疫- 肿瘤细胞相互作用、神经元共培养突触活动、癌细胞代谢等研究。保护宝贵细胞样本三色光学模块正在申请专利,包括长波长、低光毒性NIR 通道,以及专为长期活细胞试验而设计的试剂。提高生产力最多可并行使用六个微孔板,自动获取并分析图像,为您提供远程控制便利。 关键功能 专为活细胞分析设计- 多达 5 个不同的荧光通道- 每次可同时使用 HD 相位和多达 3 个荧光通道 ( 绿色 /橙色/ 近红外)- 新三色光学模块包含一个长波长,低光毒性 NIR 通道和适用于完整应用的优化试剂- 自动式转台配备 4x、10x 和 20x 物镜支持多个用户- 配备支持 3 个可互换容器的托盘以及 600 多个容器- 最多可以同时放置 6 个微孔板- 通过远程网络访问和无使用限制的许可证,可无缝支持多用户使用 广泛应用 细胞健康与增殖增殖与细胞计数细胞周期细胞凋亡细胞毒作用细胞活性线粒体膜电位 新增!ATP 代谢 新增!细胞功能免疫细胞杀伤抗体内化免疫细胞化学吞噬作用神经突动力学神经元活动血管新生三维细胞建模肿瘤球生长与活性肿瘤球侵袭类器官QC 新增!细胞运动与形态趋化性迁移和侵袭划痕迁移和侵袭
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  • 赛多利斯Incucyte 实时活细胞分析系统,可有效捕获培养箱中细胞的变化。系统支持高分辨率荧光和明场图像采集,能够实现数小时、数天或数周内数据的实时记录。系统使用灵活,从增殖分析到肿瘤球免疫杀伤检测,均可协助用户实时观察和定量复杂的生物变化。集成式软件可以简化数据分析,快速获得结果,并生成可供发表的图表和绘图。 技术优势 1. 灵活简单的样品制备:兼容多种培养容器- 在正式开始实验前,可用免标记法分析细胞融合度,监测培养瓶/ 培养皿,以确保细胞健康- 可用 96 和 384 孔板同时开展多种实验,一次性可容纳多达6 块板Incucyte 试剂可显著提高效率- 检测试剂对细胞健康和形态无影响- 采用经过验证的活细胞检测试剂和配套方案,可节省实验优化和问题查找分析的时间2. 简单灵活的实验设置快捷设置,一步完成- 向导式操作界面,可指引用户设置自动采集和分析参数- 可容纳多个用户同时使用,支持不同的采集频率和图像放大倍数- 远程监测:凭借免费许可证,即可从联网端口控制您实验室里的Incucyte 系统 向导式界面可快速进行实验设置,即使您初次使用,也能轻松完成。3. 多种成像模式获取和查看实时图像- 可采集优质高清相差、红色和绿色荧光图像以及视频- 通过自动对焦,可选择 4 倍、10 倍或 20 倍物镜成像,同时用于多个应用领域- 对细胞干扰最小- 别具匠心的移动光学设计即细胞保持静止状态,让光学元件移动,尤其适用于分析敏感和非贴壁细胞- 采取非侵入性、非干扰性图像采集模式,对整个生物学过程进行长期监测,展现出其本来状态 自动获取实时图像。4. 实时自动分析-可重复的高效图像:根据不同应用领域,选择相应的数据处理和分析模块,可对数千幅图像进行可重复的定量分析,消除操作偏差- 强大的可视化图像和动态检测:专为生物学家开发的可定制的灵活工具,能够快速评估结果,缩短从生成数据到发表的时间 使用Incucyte VesselView 立即查看培养容器中所有位置的图像,并快速评估实验结果,对感兴趣的图像可以放大通过mask 自动识别感兴趣的区域生成时间间隔的图表,可直接用于演示使用Incucyte PlateGraph可立即查看所有96 或384 孔动态趋势,并导出数据以计算EC50 或IC50 值 广泛应用 细胞健康- 细胞增殖:采用免标记法实时自动监测细胞生长,或用NucLight&trade 核标记法实时自动测量活细胞数目。- 细胞凋亡:采用简单的均相方法实时检测活细胞凋亡情况。- 细胞毒性:采用均相法实时检测细胞活性,操作简单,适用于筛选。- 神经突分析:对单纯的神经元培养物、及其与星形胶质细胞的共培养体系,自动实时检测神经突动力学。- 肿瘤球:实时监测肿瘤球的形成、生长和健康状态,并进行定量分析。细胞迁移和侵袭- 划痕迁移和侵袭:研究处理因素对细胞迁移(2D基质)或侵袭(3D凝胶)的效应。- 趋化作用:使用ClearView&trade 96孔板查看并确认趋化因子介导的趋化迁移或侵袭效应。细胞功能- 免疫细胞成簇:无需从培养箱中取出,即可对细胞成簇和扩增进行观察和定量分析。- 抗体内化:适用于抗体筛选或治疗分析的快速、动态、高通量检测。- 免疫细胞杀伤:通过对NucLight&trade 核标记的细胞直接计数或利用IncucyteCaspase 3/7 试剂检测凋亡,来分析肿瘤细胞死亡。- 细胞吞噬:对细胞吞噬pHrodo标记的生物颗粒或靶细胞进行连续分析,并生成视频。- 血管生成:使用我们的共培养检测全套试剂盒,完成血管形成的动力学分析。监测细胞和其他工作流程- 活细胞免疫细胞化学:采用新的免疫细胞化学方法揭示表面蛋白表达的动力学。- 细胞培养QC:无需从培养箱中取出细胞,即可免标记监测细胞形态和增殖。- 克隆稀释:自动扫描克隆,并通过全孔分析验证单克隆性。- 转染效率:采用GFP/RFP 监测和定量分析基因转染的效率和动态变化。- 报告基因:实时检测启动子驱动的重组GFP/RFP 报告基因表达活性。提出新问题- 设计以前无法开展的新实验- 可用于日常监测,也可通过基于图像的动态检测,解答独特的科学问题获取新答案- 实时连续分析,不错过任何一个数据点- 剖析随时间变化和因细胞而异的生物活性- 通过图像和视频这种可视化方式来验证实验结果保护培养的细胞- 无需将细胞从培养箱内取出或干扰培养环境,即可完成细胞分析- 采用的试剂不会影响细胞健康和形态提高效率- 自动获取和分析图像,轻松便利- 兼容 96和 384 孔板,并完成多重性检测- 同时可容纳多个用户和多种应用
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  • 赛多利斯Incucyte 实时活细胞分析系统,可有效捕获培养箱中细胞的变化。系统支持高分辨率荧光和明场图像采集,能够实现数小时、数天或数周内数据的实时记录。系统使用灵活,从增殖分析到肿瘤球免疫杀伤检测,均可协助用户实时观察和定量复杂的生物变化。集成式软件可以简化数据分析,快速获得结果,并生成可供发表的图表和绘图。 Incucyte SX1 活细胞分析仪活细胞分析的高性价比之选Incucyte SX1 专为小型实验室设计,助力您的细胞检测流程。避免错过重要的发现。采用可互换的托盘,兼容培养瓶、培养皿或多孔板,从细胞培养QC 到分析过程实现无缝衔接。 关键功能 轻松、灵活地制备样品- 兼容多种应用和培养器皿- 采用 Incucyte 试剂尽可能地提高效率,减少伪影 轻松设置,自动化处理- 简化实验设置- 支持远程网络访问 随时间推移采集和查看图像- 荧光和 HD 相位成像模式- 使用移动光学系统,尽可能地减少细胞干扰 实时分析- 高效、可重现的图像分析- 图像和动态测定的有效可视化 细胞分析工作流程确保每一步都能准确洞察结果无论是想通过提高细胞培养质量控制来改善实验结果,还是研究复杂的细胞间相互作用,Incucyte 都能满足您的需求。通过可互换的托盘(用来放置组织培养瓶、培养皿或多孔板)实现工作流程中步骤间的无缝衔接。
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  • 肿瘤细胞P谱样品怎么制备?

    我想做一下肿瘤细胞的P谱,但以前没有做过,制备样品是把肿瘤细胞制成细胞悬液就行了吗?内标和普通样品的内标一样吗?是不是应该先做一下细胞培养液的P谱?求大神帮助!!

  • 【转帖】iPS细胞:人造肿瘤细胞?

    各国争相发展的重点项目  iPS技术,即诱导性多能干细胞技术,是一种将成体成熟、分化的体细胞重编程获得类似胚胎干细胞的新兴技术。2007年11月美国和日本科学家分别独立宣布可将人类皮肤细胞转化为iPS细胞。这一发现被《自然》和《科学》杂志分别评为2007年第一和第二大科学进展。之后,iPS细胞研究迅猛发展,不同的国家和实验室纷纷报道了多种方法建立的iPS细胞系。就连世界第一只体细胞克隆动物多利羊的培育者伊恩·威尔莫特也宣布放弃人类胚胎干细胞克隆研究,转而进行 iPS 细胞研究,因为他认为这种细胞比胚胎干细胞更具潜在优势。  我国连续多年将干细胞研究列入“863”、“973”、国家自然基金重点项目。国务院2006年发布的《国家中长期科学和技术发展规划纲要(2006-2020年)》中,干细胞作为五项生物技术之一成为未来15年我国前沿技术的重点研究领域。  致瘤风险浮出水面  Yamanaka研究组在《自然·生物技术》上发表的文章显示,用iPS细胞诱导的神经干细胞,即使不含c-Myc(曾被认为是导致肿瘤的主要原因),在植入NOD/SCID免疫缺陷小鼠后仍有很强的致瘤性,甚至高于胚胎干细胞。   他们共研究了36个iPS细胞克隆,在诱导方式上,有些诱导剂配方中含有c-Myc基因,有些没有,因此具有较好的代表性。同时他们选择了3株胚胎干细胞作为对照。在45周的观察中,移植胚胎干细胞来源神经干细胞的34只小鼠有4只长出肿瘤。在100只移植胚胎成纤维细胞来源的iPS神经干细胞小鼠中34只发现肿瘤,概率和胚胎干细胞相当。在55只移植成人成纤维细胞来源的iPS神经干细胞小鼠中46只发现肿瘤,概率远高于胚胎干细胞。在36只移植肝细胞来源的iPS神经干细胞小鼠中10只发现肿瘤,概率高于胚胎干细胞。8只移植胃上皮细胞来源的iPS神经干细胞小鼠中未发现肿瘤。病理学检查证实肿瘤均为畸胎瘤,部分为恶性畸胎瘤。  研究还发现,以前认为致瘤性很强的c-Myc在去掉后并没有减少iPS神经干细胞的致瘤性,相反以前认为没有致瘤性的Nanog基因却可以明显增强iPS神经干细胞的致瘤性。  这次试验的另一个意外结果是并未发现在生成的肿瘤细胞中有c-Myc或其他基因的激活。以前的观点认为,转入的癌基因是iPS致瘤性的基础,只要在iPS细胞诱导成功后通过各种方法去除已完成使命的癌基因即可使iPS细胞免于致瘤性。这次试验的结果无疑给这些想法留下了阴影,而且使iPS致瘤的机制更加扑朔迷离。

  • Nature:终于逮到你了!肿瘤干细胞

    http://www.bioon.com/biology/UploadFiles/201208/2012080216013081.jpg癌症研究人员可以测定肿瘤细胞基因组的序列,扫描其异常的基因活性,剖析其突变的蛋白质和研究它们在实验室培养皿中的生长,但研究者一直无法跟踪细胞形成肿瘤的过程。现在三个独立研究小组在小鼠体内做到了这一点。他们的研究结果支持这样的观点:一小部分细胞驱动肿瘤的生长,而想要治愈癌症可能需要将这些所谓肿瘤干细胞清除。目前还无法确认,这些从脑瘤,肠癌和皮肤癌研究的结论是否适用于其他类型肿瘤,但是得克萨斯大学西南医学中心的路易斯·帕拉达认为,如果它们适用于其他肿瘤,"将深刻地改变目前的化疗疗效评价和临床疗法的制定标准"。 不仅是看某种疗法是否缩小肿瘤,研究人员将更关注是否杀死了正确的细胞。帕拉达和他的同事们想检测是否特异性标识健康成人神经干细胞的一个遗传标记,也可标识神经母细胞瘤中的癌症干细胞。他们发现,所有神经母细胞瘤样本中至少有几个标记细胞 - 大概是干细胞。未标记细胞可被标准化疗杀死,但肿瘤可迅速恢复。进一步的实验表明,未标记细胞起源于标记的细胞祖先。当研究者把化疗与抑制标记细胞的遗传手段相结合进行治疗时,帕拉达说,肿瘤显著缩小到"残留遗迹"的水平。在另一项研究中,荷兰乌得勒支Hubrecht研究所的干细胞生物学家们把注意力瞄着了肠道。利用药物驱动的荧光素标志物表达系统,他们在小鼠体内证实,多种不同类型的肿瘤细胞,其实是来源于同一干细胞的。而且,这些干细胞是肿瘤发展的驱动力。对皮肤癌的研究,Blanpain和他的小组标记单个肿瘤细胞,而不是特异地标记干细胞。他们发现,细胞表现出两种不同的分工模式:它们要么在慢慢耗尽前分裂出少数细胞,或者产生许多细胞。这再次证实,一类独特的细胞亚群是肿瘤生长的驱动力。研究者说,下一步的研究计划将是,搞清楚这些实验所跟踪的细胞如何与通过多年移植实验所确定的,假定的癌症干细胞相联系的。研究人员已经紧锣密鼓地在寻找杀死这些细胞的方法;现在他们有更多的工具来测试这样的策略是否会奏效。

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  • 肿瘤干细胞克隆的高内涵筛选应用
    肿瘤干细胞(CSC)除了具有高度致瘤性、无限的增殖潜力和产生恶性肿瘤的能力外,还在肿瘤转移和治疗后原发肿瘤的再增殖中发挥作用,更可以抵抗传统的化疗以及更现代的靶向治疗,CSC的这些特性使得开发治疗恶性肿瘤的有效疗法变得复杂。克隆形成试验作为CSC功能研究的一个标准,通过检测CSC形成克隆的能力,既可以评估其干性,也可以对后续的放化疗进行个性化的用药指导,但是目前对CSC的克隆表征进行高通量筛选还存在,考虑到CSC的复杂性及其临床相关性,需要有更高效的方法来对CSC的克隆表征进行高通量筛选分析,并在此基础并开发更有效地针对这些人群的药物或其他疗法。Advanced High-Content-Screening Applications of Clonogenicity in Cancer一文就提出了一种运用高内涵系统来量化2D和3D细胞培养模型中CSC克隆数量、大小和形态,并基于荧光标记区分克隆的高通量方法。图一:2D培养模式下用化合物61预处理的SW620细胞克隆图像,全实验组克隆计数、平均表面积和全孔融合率定量分析在2D培养模式中,使用极限稀释法将SW620结直肠癌细胞从2500个细胞/孔稀释至1个细胞/孔,并配合不同化合物处理,在培养的第8天对细胞进行核染色。结合明场与Hoechst 33342染色图像,对细胞形成的克隆数量、面积和融合度进行了分析,数据显示SW620细胞的克隆形成对TOP2A抑制剂(化合物61)的处理呈现出浓度依赖性反应,并且不同处理方式(预处理VS.连续处理)克隆的生长情况也有所不同。图二:3D培养模式中SW620细胞克隆的计数和形态学分析在3D培养模式中,采用同样的方法对SW620细胞(混于基质胶中)进行稀释,从40000个细胞/400μl稀释至约1248个细胞/200μl,并以50μl/孔接种于96孔培养板中,培养到第7-10天时同样对细胞进行核染色(Hoechst 33342)并使用高内涵系统对样品进行3D成像和分析,结果显示与2500个细胞相比,在5000个铺板细胞上观察到的克隆数量增加了一倍以上,而克隆表面积和体积则保持相对一致。图三:3D培养模式中A549细胞克隆的形态学分析为了评估这一体系在不同种类、不同形态的肿瘤细胞中的适用性,研究中还用A549肺癌细胞进行了验证,形态学进行分析发现A549细胞球长成了两种不同典型形态的克隆—“圆形”、“分支”,随后用高内涵分析软件对这两种细胞球的体积、表面积、椭球轴(长度、短轴与长轴之比、中轴长度、最短轴长度、倾斜度和方向)、球度和最大厚度等形态学参数进行定量,这些结果表明A549细胞可能含有两种不同的CSC亚群。图四:2D培养SW620克隆中CD44和CD24的免疫荧光染而对CSCs的细胞表面标志物(高CD44 ,低CD24)进行图像分析后发现,CD24表达在所有细胞接种浓度下不变,CD44表达随着细胞数量的减少而增加,CD44high/CD24low在细胞中的表达与其干细胞潜能一致。对比只分析膜区域的荧光强度和全细胞区域分析的结果其表达趋势是相似的。本文中介绍的工作概述了克隆形成集落的2D和3D分析的方法、算法和工作流程,可广泛适用于其他HCS仪器和成像分割软件。这些高内涵技术可用于研究促进CSC干性的复杂机制,但也可广泛用于其他药物的发现,以及评估小分子药物、生物制剂和放射治疗的治疗潜力。高内涵系统的智能预扫功能允许灵活地执行初始低倍镜大范围扫描以定位感兴趣的克隆,并自动以更高的放大倍数仅对所需克隆的XYZ位置进行重新扫描。在大量样本中定位研究人员感兴趣的特殊对象大大减少了使用整个成像过程所需的时间。参考文献Esquer H , Zhou Q , Abraham A D , et al. Advanced High-Content-Screening Applications of Clonogenicity in Cancer[J]. SLAS DISCOVERY Advancing the Science of Drug Discovery, 2020
  • 直播预告|探索肿瘤微环境——单细胞解析肿瘤浸润白细胞
    肿瘤浸润白细胞( Tumor Infiltrating Leukocytes, TIL) 作为深入实体肿瘤内部的免疫细胞群体,在肿瘤-免疫学研究中占据重要地位。MACS Technology以卓越的技术致力于高质量TIL新发现,并助力肿瘤微环境研究。Agenda:肿瘤微环境与肿瘤浸润白细胞研究肿瘤浸润白细胞的目的肿瘤浸润白细胞研究的困难及挑战美天旎肿瘤浸润白细胞研究解决方案Q&A主讲人简介:田瑜博士,Ph.D., Product Manager, Miltenyi Biotec复旦大学神经生物学国家重点实验室取得博士学位,后就职于Prof. Brian Seed研究室从事单克隆抗体表达系统的研发工作。2016年进入生命科学产品营销领域,现任美天旎中国产品经理。直播时间:2020年3月26日(本周四)下午3:00—4:00报名方式:扫描上方二维码,即可报名参与!
  • Cell:单兵作战 VS 团体作战——高内涵助力辨别循环肿瘤细胞作用形态
    红细胞,血小板,中性粒细胞,单核细胞,淋巴细胞。。。这些细胞不仅是我们体内循环系统中常见的细胞类型,在实验室中出镜率也非常高,我们统称它们为悬浮细胞。实际上,对于悬浮细胞的研究,尤其是分选和荧光定量,我们常用的技术手段是流式细胞术FACS。但尽管FACS能准确的进行悬浮细胞的单细胞荧光定量,如果我们想要知道单个细胞的形态变化,蛋白表达的位置信息,以及基于表型的高通量药物筛选,就需要高内涵成像分析系统的帮助啦。之前我们已经给大家介绍过珀金埃尔默高内涵系统实现红细胞变形的药物筛选方法,点下方可以回顾哟。往期回顾Nature Protocol——微球过滤结合高内涵成像实现基于红细胞变形的高通量药物筛选:https://mp.weixin.qq.com/s/2Kz3CDIqKVGbw17-ZyxutQ今天我们再来关注循环系统中一类很特殊的悬浮细胞:循环肿瘤细胞(Circulating Tumor Cell,CTC)。CTC是癌症病人体内由实体肿瘤病灶脱离而进入血管的肿瘤细胞,它们在外周血中痕量存在,大部分也会发生凋亡和被吞噬,但依旧有少数隐藏极好并伺机而动发展为肿瘤转移灶,因此是肿瘤发生恶性转移的凶手之一(图1)。 CTCs在血管中的“命运”大量研究表明,CTC在外周血中以不同形态存在,有游离的单个CTC,也有聚集成团的CTC集簇。而它们形成集簇的能力更是与肿瘤的转移密切相关。今年1月Cell杂志就在线发表了瑞士Basel大学Aceto团队关于乳腺癌病人血中CTC单兵作战和团体作战的相关工作。通过全景观基因测序,他们解释了CTC集簇比起单细胞缺少了关键位点的DNA甲基化重建,因此更容易导致肿瘤的恶性转移。进一步利用Operetta高内涵成像及Columbus分析系统,对CTC成像后集簇的大小及相关功能进行定量分析,试图找到解离CTC集簇使其变为单兵作战从而失去转移能力的方式。幸运的是,通过高内涵筛选他们从2485个FDA批准的药物中找到了一种钠/钾ATP酶抑制剂,可以解离CTC集簇成为单细胞(图2),继而诱导DNA甲基化,最终抑制肿瘤的转移。基于细胞存活率和集簇大小的高内涵药物筛选尽管CTC是外周血悬浮细胞中的稀有事件,但是作为具有高灵敏度,高通量和高速度的表型筛选领导者,PerkinElmer高内涵成像分析系统一如既往的表现出了强大的助力作用,从未让科研工作者失望过。表型筛选,我们是认真的。参考文献1. Gkountela, S., Castro-Giner, F., Szczerba, B. M., Vetter, M., Landin, J., Scherrer, R., Krol, I., Scheidmann, M. C., Beisel, C., Stirnimann, C. U., Kurzeder, C., Heinzelmann-Schwarz, V., Rochlitz, C., Weber, W. P., and Aceto, N. (2019) Circulating Tumor Cell Clustering Shapes DNA Methylation to Enable Metastasis Seeding, Cell 176, 98-112 e114.2. Mocellin, S., Keilholz, U., Rossi, C. R., and Nitti, D. (2006) Circulating tumor cells: the ' leukemic phase' of solid cancers, Trends in molecular medicine 12, 130-139.
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