叶绿素荧光与成像分析系统

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  • 北京易科泰生态技术有限公司 金牌15年
    400-860-5168转1895
    北京易科泰生态技术有限公司成立于2002年，为中关村高新技术企业，致力于生态-农业-健康研究监测技术推广、研发与服务，特别是在光谱成像技术（高光谱成像技术、叶绿素荧光成像技术、红外热成像技术、无人机遥感等）、植物表型分析技术、呼吸与能量代谢测量技术等方面，与国际领先企业PSI、Specim、Sable等合作，致力于植物科学、土壤与地球科学、动物能量代谢、水体与藻类及生态环境领域先进仪器技术的引进推广和技术研发集成，为植物/作物表型分析、生态修复及生态保护、能量代谢测量等提供规划设计、技术方案与系统集成、技术咨询与科技服务。公司技术团队80％以上具备硕士或硕士以上学位，并与中国科学院研究生院、中科院植物研究所、中科院动物所、中科院地理科学与资源研究所、中国农科院、中国林科院、中国环科院、中国水科院、清华大学、中国农业大学、北京林业大学、北京大学、中国海洋大学、陕西师范大学、内蒙古大学等建立了长期的技术合作交流关系。 公司下设有叶绿素荧光技术与植物表型业务部、EcoTech实验室、光谱成像与无人机遥感事业部及无人机遥感研究中心（与陕西师范大学合作建立）、动物能量代谢实验室、内蒙古阿拉善蒙古牛生态牧业研究院及青岛分公司。实验室拥有叶绿素荧光成像、叶绿素荧光仪、水体藻类荧光仪、SPECIM高光谱仪、WORKSWELL红外热成像仪、EasyChem全自动化学分析仪、MicroMac1000水质在线监测系统、ACE土壤呼吸自动监测系统、SoilBox便携式土壤气体通量测量系统、动物呼吸测量系统、LCpro+光合作用测量仪、Hood土壤入渗仪、年轮分析仪等各种仪器设备，可以进行实验研究分析、实验培训等，欢迎与易科泰生态研究室开展合作研究。 易科泰公司与欧洲PSI公司（叶绿素荧光技术与表型分析技术）、美国SABLE公司（动物能量代谢技术）、欧洲SPECIM公司（高光谱成像技术）、欧洲WORKSWELL公司（红外热成像技术）、欧洲ATOMTRACE公司（LIBS元素分析技术）、欧洲BCN无人机遥感中心、欧洲ITRAX公司（样芯密度扫描与元素分析）、美国VERIS公司、英国ADC公司、德国UGT公司、欧洲SYSTEA公司等国际著名生态仪器技术领域的研发机构和厂商建立了密切的合作关系，在FluorCam叶绿素荧光成像与荧光测量技术、PlantScreen植物表型分析技术、高光谱成像技术、红外热成像技术、光合作用与植物生理生态研究监测、土壤呼吸与碳通量研究监测、动物呼吸代谢测量、水质分析与藻类研究监测、CoreScanner样芯密度CT与元素分析技术、LIBS元素分析技术、无人机生态遥感技术等生态仪器技术及其系统方案集成有着丰富的经验，成为我国农业、林业、地球科学、生态环境研究等领域科技进步的重要研究技术支持力量。由公司研制生产的EcoDrone无人机遥感平台、SoilTron多功能小型蒸渗仪技术、SoilBox土壤呼吸测量技术、PhenoPlot轻便型作物表型分析系统、SCG-N土壤剖面CO2／O2梯度监测系统、植物生理生态监测技术、动物能量代谢测量技术等，在中科院修购项目、农业部学科群项目、CERN网络（生态系统监测网络）等项目中发挥重要作用。 “工欲善其事，必先利其器”，易科泰公司将秉承“利其器，善其事”的经营理念，为国内生态-农业-健康研究与发展提供最优的技术方案和服务。欢迎关注易科泰公众号：
    主营产品： 植物荧光成像   植物表型测量   叶绿素藻类   动物代谢检测  
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  • 北京博普特科技有限公司 金牌4年
    400-860-5168转4713
    北京博普特科技有限公司成立于2008年，公司主要为植物、食品、生态、土壤、环境、气象、遥感行业提供科研仪器以及系统解决方案。涵盖田间表型成像系统、室内表型成像系统、种子表型成像系统、根系表型成像系统、显微表型成像系统等各个领域。公司主营产品有：WIWAM植物表型成像系统（RGB成像模块、多光谱激光雷达模块、叶绿素荧光成像模块、高光谱成像模块、近红外成像模块、计算机断层扫描模块、红外成像模块、3D激光雷达模块等）；Videometer植物、种子多光谱表型成像系统、根系多光谱表型成像系统、VideometerLiq液体稳定多光谱成像系统、VideometerMic显微多光谱成像系统、Videometer Minilab 便携式多光谱成像系统、Videometer LabUV紫外光多光谱成像系统、VideometerLab XY高通量种子表型成像系统；Plant-Ditech公司的Plantarray高通量植物生理表型研究平台、植物逆境生物学生理研究平台、植物种质资源精准评价与鉴定平台以及SPAC分析系统；Fraunhofer研究院的便携式植物种子断层扫描系统、台式计算机断层扫描系统、全自动种子断层扫描系统、大型落地式根系表型成像系统；Hiphen 公司Airphen多光谱表型成像系统、Hiphen LITERAL手持植物表型冠层成像系统、Hiphen推车多光谱成像系统、Phenomobile全自动全植株智能表型成像车；HAIP 公司的BlackBird科研级高光谱成像系统、Blackbullet科研级高光谱成像系统、Blackbox科研级高光谱成像系统、BlackIndustry 工业级高光谱成像系统、Black mobile便携式高光谱成像系统；SeQso高通量种子表型与播种一体化系统、CF叶绿素种子成熟度测量仪、自动种子分拣系统（X光、多光谱、高光谱、叶绿素荧光）；STEPS公司的植物生理生态监测系统、在线光合生理监测系统、土壤养分测量系统、植物养分测量系统、土壤5合1多参数测量仪、土壤直测PH计、盐度/活度检测仪；Pessl公司的植物生态环境智能传感器平台、植物物候远程监测系统；Inno-concept公司的植物活力胁迫测量系统、植物抗逆研究测量系统、气相离子迁移谱仪；Aquation水陆两用叶绿素荧光检测系统、经典和手持叶绿素荧光仪、Aquation公司的水下光合呼吸测量系统；EMS公司的便携式物联网乙烯气体分析仪、温室气体物联网监测系统；Cleangrow多参数离子测定仪、植物工厂自动8离子测定仪；Schaller全谷物湿度仪；EGC植物生长培养箱和生长室等等。
    主营产品： 植物表型测量   土壤测定仪   土壤酸度计   根系监测系统  
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  • 天尔分析仪器（天津）有限公司 白金3年
    400-880-2705
    天尔分析仪器（天津）有限公司是一家致力于水质检测仪器、水质检测试剂、大数据信息化系统，集研发、生产、销售、服务、信息化建设于一体的国家高新技术企业，为客户提供水质检测产品、服务及整体解决方案.公司产品线：COD测定仪、全自动BOD测定仪、紫外多参数水质测定仪、氨氮测定仪、总磷测定仪、总氮测定仪、红外分光测油仪、紫外智能测油仪、便携综合多参数水质测定仪、铁、六价铬、锰、镍水质重金属测定仪、便携式荧光测油仪、便携式叶绿素A检测仪、PH、电导率、溶解氧、浊度测定仪、离子计、微生物检测仪、多功能消解仪、水质污染物测定仪等上百种水中物质的检测仪.产品用于：环境监测站、高等院校、各执法部门、水务系统、各排污企业等.公司技术实力雄厚，是国家高新技术企业，通过ISO9001质量管理体系认证和ISO14001环境管理体系的认证，产品线具有省级检测报告，专利及软件著作权共计30多项资质，是行业技术标杆企业；天尔仪器以“专注、诚信、创新、共赢”为服务精神，以技术为核心，质量为保障，售后为根本，创新整合带领行业发展，做令人尊敬的公众公司，为国家生态环境贡献力量.
    主营产品： 水质分析仪   COD测定仪   氨氮测定仪   测油仪  
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叶绿素荧光与成像分析系统相关的仪器

  • FluorCam叶绿素荧光技术叶绿素荧光成像系统 400-860-5168转1895
    FC 00-C/1010GFP封闭式多光谱植物荧光成像系统是一个高度创新的，世界范围内广泛应用的多光谱动力学荧光成像系统。这个系统高度紧凑且可以实现测量样品的暗适应。它由一个CCD相机，4个固定的LED发光板，高性能PC和兼容软件包组成。仪器可选配一个8位滤波轮实现多波段成像。LED发光板的均一性照明面积为13× 13 cm。适用对象为小植物，离体叶片，海藻稀释物等。系统结构紧凑且易于实现样品的暗适应，功能强大的软件可以控制整个系统，获取数据和处理图像。应用领域植物光合特性和代谢紊乱筛选生物与非生物胁迫检测植物抗胁迫能力或者易感性研究气孔非均一性研究代谢混乱研究长势与产量评估植物&mdash &mdash 微生物交互作用研究植物&mdash &mdash 原生动物交互作用研究基因标记检测转基因表达研究功能特点：实验过程和测量参数荧光诱导过程（Kausky效应）分析叶绿素荧光淬灭过程（NPQ过程）分析PAR吸收系数测定QA再氧化过程分析OJIP曲线测定高达1µ s时间分辨率的快速荧光诱导分析可测量与计算多达50个参数: F0, FM, FV, F0' , FM' , FV' , QY(II)，NPQ, &Phi PSII, FV/FM, FV' /FM' , RFd, qN, qP, PAR-吸光系数, 电子传递速率(ETR), 及其它.实验过程和测量参数稳态荧光测定GFP，EGFP、wtGFP、BFP、YFP或者其它荧光蛋白及荧光素荧光诱导过程（Kausky效应）分析叶绿素荧光淬灭过程（NPQ过程）分析PAR吸收系数测定QA再氧化过程分析OJIP曲线测定高达1µ s时间分辨率的快速荧光诱导分析可测量与计算多达50个参数: F0, FM, FV, F0' , FM' , FV' , QY(II)，NPQ, &Phi PSII, FV/FM, FV' /FM' , RFd, qN, qP, PAR-吸光系数, 电子传递速率(ETR), 及其它典型样品叶片，整株植物，小树苗，果实，蔬菜，苔藓，地衣，藻青菌，绿藻，各种转基因植物，适用于不同植物样品的支架，培养皿与多孔板蒙版 操作软件与实验结果内置常用测量程序用户可自定义实验程序，界面友好可自动重复测量视野内单个植物或样品的自动识别与标记视野内所有样品数据的动力学分析多图像处理工具条形码读卡器支持，便于批量处理样品数据可导出为excelWindows 2000, XP, Vista，Win7兼容稳态荧光测定荧光蛋白和荧光素家族具有巨大的光谱多样性，它们通常具有不同的激发光谱和释放光谱。封闭式荧光成像系统上安装了完全由软件控制和电动驱动的滤波轮，以及一系列的滤光片组，可以来对GFP，EGFP、wtGFP、BFP、YFP或者其它波段荧光蛋白进行检测和成像。高分辨率相机1392 x 1040 像素 可选 640 x 480 像素或512 x 512 像素；低像素模式适用于快速荧光过程的捕获；高像素模式适用于叶绿素荧光和需要长时间曝光的弱稳态荧光测量或者需要高空间分辨率的情景（显微视野）7位滤波轮多色激发光源wtGFP 主激发峰 395 - 397 nm，发射峰 504 nm. 滤波器建议设置: 激发光420 nm短通，532/28 或 530/25 nm检测.EGFP 主激发峰中心波长488 nm，发射峰 507 - 509 nm. 滤波器建议设置:激发光480 nm短通，532/28 或 530/25 nm检测.BFP 主激发峰 384 nm，发射峰近 448 nm.滤波器建议设置: 激发光400 nm短通，469/35 nm检测. 配置型号指南：标准版1&mdash &mdash 超高速成像版：512 x 512 像素，50幅/秒超快CCD，适用于荧光参数的精细再现标准版2&mdash &mdash 超高分辨率版：1392 x 1040 像素分辨率，适用于高空间分辨率的应用，如气孔动态标准版3&mdash &mdash PAR吸收修正版：可测植物真实F0&rsquo 与PAR吸收系数，用于修正荧光参数和ETR 标准版4&mdash &mdash 功能增强版：超强STF，强度可达120,000 µ mol(photons)/m² .s，可实现100µ s脉冲，用于QA瞬间饱和与再氧化研究；可同时进行荧光蛋白与荧光素成像，包括GFP、wGFP、eGFP、YFP、BFP、CY3, CY5等，用于转基因研究。 1.FC 1000-H便携式叶绿素荧光成像系统 FC 1000-H便携式叶绿素荧光成像系统被设计用来在田间和实验室内对叶片和小植物的荧光参数成像进行动力学解析，典型的研究区域为3.5× 3.5 cm。在所有应用中，系统可以对光化光和饱和光诱导的荧光瞬变过程进行成像，光化光照射的时间和强度可以由用户自定义的程序来决定。软件包中包含了最常用的实验程序和简单实用且功能强大的程序设计语言，熟练的研究人员可以设计自己的闪光序列和测量过程。 FC 1000-H便携式叶绿素荧光成像系统是一个轻巧的便携系统，尤其适用于野外实验。系统可以通过肩背便携包中的密封铅酸电池在野外进行供电，稳固轻巧的三脚架使得野外测量变得简单易行。 2.FC 1000-LC便携式光合联用型叶绿素荧光成像系统FC 1000-LC便携式光合联用型叶绿素荧光成像系统专门设计来与光合仪的气体交换叶室安装在一起使用，是一个高度创新的，世界范围内广泛应用的多广谱动力学荧光成像系统。它具备其他荧光成像系统的所有特征。这个系统高度紧凑，且可以实现测量样品的暗适应。叶绿素荧光测量与成像可以与气体交换测量同步进行，获取更丰富准确的信息。而且精确的样品所处环境控制功能，例如影响光合和蒸腾速率的温度、相对湿度和氧气和CO2的分压，远优于普通叶绿素荧光成像系统。系统可与目前市场上绝大多数厂家的光合仪联用，如Licor，ADC，PPS等。3. FC800-O开放式植物荧光成像系统 FC 800-O开放式荧光成像系统是一款高度模块化的设备，具体配置可以定制。其LED发光板和饱和光源可以任意角度和到样品的距离排列，也可以通过调整CCD的位置来增加精度。标准配置的最大成像面积为13× 13 cm ，通过选择光源的尺寸，可调整最大成像面积为20× 20 cm 。测量参数与技术指标请参考FC-800-C封闭式植物荧光成像系统。4. FC 900-TR开放式植物样带叶绿素荧光扫描成像系统FC 900-TR开放式植物样带叶绿素荧光扫描成像系统高度紧凑，主要由一个扫描控制系统，CCD相机，4个固定的LED发光板，高性能PC和兼容软件包组成。仪器可选配一个8位滤波轮实现多波段成像。测量区域为200× 100 cm。该系统适用于实验室或样地中样带植株的原位快速测量，尤其适用于监测多因子实验中植物对各种处理的响应。测量参数与技术指标请参考FC-800-C封闭式植物荧光成像系统。尤其适用于高通量筛查和监测胁迫梯度对植物影响；适合户外与温室使用；结构坚固耐用，光源与相机位置可移动；无需取下或者移动样品；标准成像尺寸为20× 200 cm，其它尺寸可调整。5. FC 900-R野外移动式植物叶绿素荧光成像系统 FC 900-R野外移动式植物荧光成像系统主要由一个可移动支架，CCD相机，4个固定的LED发光板，高性能PC和兼容软件包组成。仪器可选配一个8位滤波轮实现多波段成像。LED发光板的均一性照明面积为20× 20 cm，适用于野外较大植物（如大豆、小麦）的原位无损测量。成像高度20 到 150 cm可调，可配真彩镜头。测量参数与技术指标请参考FC-800-C封闭式植物荧光成像系统。适用于野外大尺寸扫描测量面积20× 20 cm.移动系统极其坚固稳定可在粗糙地表轻松移动配置样品暗适应箱从 20 to 150 cm高度可调无需样品分离与破坏6. FC 900-A拱形三维立体植物叶绿素荧光扫描成像系统 FC 900-A拱形三维立体植物叶绿素荧光扫描成像系统是一个高度创新的多广谱动力学荧光成像系统。这个系统高度紧凑且可以实现对测量样品的3D成像，它由一个CCD相机，LED发光板，拱形支架，高性能PC和兼容软件包组成。FC 900-A拱形三维立体植物叶绿素荧光扫描成像系统通过自动程序获取样品台上整株植物的3D图像，适用于对植物进行3D空间异质性研究以及荧光蛋白与荧光素等荧光标记在植株上表达的空间异质性。专用于三维荧光成像独特耐用的结构支架光源位置可自动调整可移动的相机使得可以从任意角度测量无需分离与移动样品软件可生成3D图像7. XY-Plane多广谱大型植物叶绿素荧光扫描成像系统XY-Plane多广谱大型植物叶绿素荧光扫描成像系统是一个高度创新的多广谱动力学荧光成像系统。该系统可以实现测量样品的暗适应，它由一个CCD相机，4个固定的LED发光板，高性能PC和兼容软件包组成。仪器可选配一个8位滤波轮实现多波段成像，成像面积为80× 40 cm。适用对象为整株植物，离体叶片，海藻稀释物等。XY-Plane系统用于自动进行大型植物生长室中植物样品的大量筛选，FC 900-XY/8040植物荧光成像系统安装在一个坚固耐用的柜式结构中，所有部件可被安全存放，人性化的设计使得放置样品非常便捷。柜式结构内是一个光源和成像CCD位置可自由移动的自动控制框架。测量面积80× 40 cm.适用于高通量筛选尤其适合大培养盘中样品的多谱段分析适用于生物和非生物胁迫研究和转基因植物筛查光源与相机的高度和位置可调整无需分离与破坏样品8. FC 2000显微叶绿素荧光成像系统1. Micro-FluorCam FC 2000-ST内含: CCD 相机 简单显微镜架 光学组件 控制单元 高性能PC 激发光源 软件包 使用手册.2. Micro-FluorCam FC 2000-EN内含: CCD 相机 带可更换可扩展组件的机械强化显微镜架(Olympus BX40) 机械强化光学组件 控制单元 高性能PC 激发光源 软件包 使用手册.3. Micro-FluorCam FC 2000-MFW内含: 6位滤波轮 CCD相机 带可更换可扩展组件的机械强化显微镜架(Olympus BX40) 机械强化光学组件 控制单元 PC高性能PC 激发光源 软件包 使用手册.4. Micro-FluorCam FC 2000-EFW内含：6位完全软件控制的滤波轮 CCD相机 带可更换可扩展组件的机械强化显微镜架(Olympus BX40) 机械强化光学组件 控制单元 高性能PC 激发光源 软件包 使用手册.Micro-FluorCam FC2000-EFW: 6-位滤波器 (插入式)5. Kinetic Fluorescence Microscope FC 2000-Z 详见FKM多功能荧光动态显微监测系统 产地：欧洲 典型应用：1. CLAIRE M. M. GACHON etc. Single-cell chlorophyll fluorescence kinetic microscopy of Pylaiella littoralis (Phaeophyceae) infected by Chytridium polysiphoniae (Chytridiomycota). Eur. J. Phycol., (2006), 41(4): 395&ndash 403Fig. 2. UV激发荧光（壶菌属感染的褐藻过程）。A、C为亮视野图片；B、D为UV激发荧光情况；A、B为单细胞感染对照；C、D为严重感染对照。 Fig. 1.叶绿素荧光动力学（壶菌属感染的褐藻）.A为典型Kautsky诱导曲线（实线）与实测曲线比较；B为亮视野图片；C为 Fm值假彩图片；D为NPQ值假彩图片 请致电索取参考文献列表
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    厂商： 北京易科泰生态技术有限公司
    品牌： 捷克PSI
    型号： FluorCam -
    价格： 面议
  • PlantScreen叶绿素荧光与RGB成像分析系统 400-860-5168转1895
    PlantScreen叶绿素荧光与RGB自动扫描成像分析系统集成了自动化控制系统、FluorCam大型叶绿素荧光成像测量分析、RGB植物真彩成像分析等先进技术，实现对各种培养植物——从拟南芥、水稻到各种其它植物的生理生态与形态结构成像分析，用于高通量植物表型成像分析测量、植物胁迫响应成像分析测量、生态毒理学与污染生态学研究、性状识别及植物生理生态分析研究、作物育种与抗性检测、生物多样性／遗传多样性表型检测分析及土壤种子库研究等。成像平台可在主机箱内XYZ三维自动化移动，自动扫瞄成像范围为1500px x 3225px，植物最大高度约1250px。 系统配置与工作原理： 系统由XYZ三维自动控制箱、XYZ三维移动成像平台及自动控制与分析软件等组成，LED光源、FluorCam叶绿素荧光成像、RGB成像集成于一个可XYZ三维自动化移动的成像平台上，程序控制XYZ三维精确定位和定时，在线数据分析。采用世界上单幅成像面积最大的叶绿素荧光成像系统，成像面积达35×875px。 技术指标：1. XYZ三轴机械臂可自由移动至植物上方成像分析，成像扫瞄面积范围1500px x 3225px（可选配其它大型系统），植物高度1225px，镜物距625px，Z轴最大负重30kg2. 标准配置X轴活动范围0－2525px，精确度±1mm；Y轴活动范围0－1800px，精确度±1mm；Z轴活动范围0-1225px，精确度±5mm；3. 叶绿素荧光成像：镜头分辨率1392x1040像素，单幅成像面积35x875px，测量光橙色618nm，橙色和白色双波长光化学光，饱和光闪为白色，最大光强3600μmol/m2/s,具735nm红外光源4. 叶绿素荧光成像测量参数包括Fo, Fm, Fv, Fo’, Fm’, Fv’, Ft, Fv/Fm, Fv’/Fm’, Phi_PSII, NPQ, qN, qP, Rfd等几十个叶绿素荧光参数5. RGB成像分析测量参数包括：1) 叶面积（Leaf Area: Useful for monitoring growth rate） 2) 植物紧实度／紧密度（Solidity/Compactness. Ratio between the area covered by the plant’s convex hull and the area covered by the actual plant）3) 叶片周长（Leaf Perimeter: Particularly useful for the basic leaf shape and width evaluation (combined with leaf area)）4) 偏心率（Eccentricity: Plant shape estimation, scalar number, eccentricity of the ellipse with same second moments as the plant (0...circle, 1...line segment)）5) 叶圆度（Roundness: Based on evaluating the ratio between leaf area and perimeter. Gives information about leaf roundness）6) 叶宽指数（Medium Leaf Width Index: Leaf area proportional to the plant skeleton (i.e. reduction of the leaf to line segment)）7) 叶片细长度SOL (Slenderness of Leaves)8) 植物圆直径（Circle Diameter. Diameter of a circle with the same area as the plant）9) 凸包面积（Convex Hull Area. Useful for compactness evaluation）10) 植物质心（Centroid. Center of the plant mass position (particularly useful for the eccentricity evaluation)）11) 节间距（Internodal Distances）12) 生长高度（Growth Height）13) 植物三维最大高度和宽度（Maximum Height and Width of Plant in 3 Dimensions）14) 相对生长速率（Relative growth rate）15) 叶倾角（Leaf Angle）16) 节叶片数量（Leaf Number at Nodes）17) 其它参数如用于植物适合度估算的颜色定量分级、绿度指数（Other parameters such as color segmentation for plant fitness evaluation, greening index and others）6. 高灵敏度RGB成像传感器，CMOS 1/2”,分辨率2560x1920像素，像素大小2.2μm，四个LEDs高强白色光源，成像信息包括时间和位置，纪录格式为日期－月份－年度－小时－分钟－秒－Pos_X_Y_Z.bmp7. 系统控制与数据采集分析系统：用户友好的图形界面，用户定义、可编辑自动测量程序（protocols），控制单元有主电源开关、紧急关闭、XYZ三维轴启动开关、暂停键、移动键等，用户名和密码保护8. 程序控制XYZ三维精确定位和定时，并纪录带时间和三维空间位置的数据（四维信息数据）9. 三相电源供电，3x230/220VAC，50/60Hz10. 大小规格5000px(长)x3750px(宽)x230(高)，重量约400kg 产地：欧洲
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    厂商： 北京易科泰生态技术有限公司
    品牌： 捷克PSI
    型号： PlantScreen RGB
    价格： 50万 - 100万元
  • FluorCam封闭式叶绿素荧光成像系统 400-860-5168转1895
    PSI公司首席科学家Nedbal教授与公司总裁Trtilek博士等首次将PAM叶绿素荧光技术与CCD技术结合在一起，于1996年在世界上成功研制生产出FluorCam叶绿素荧光成像系统（Heck等，1999；Nedbal等，2000；Govindjee and Nedbal, 2000）。FluorCam叶绿素荧光成像技术成为上世纪90年代叶绿素荧光技术的重要突破，使科学家们对光合作用与叶绿素荧光的研究一下子进入二维世界和显微世界。目前PSI公司已成为世界上最权威、使用最广、种类最全面、发表论文最多的叶绿素荧光成像专业生产厂商。 FluorCam封闭式叶绿素荧光成像系统是一款高度集成、高度创新、使用方便、应用广泛的高端叶绿素荧光技术设备，高分辨度CCD镜头、4个固定的LED光源板及控制系统等集成于一个暗适应操作箱内，植物样品放置在暗适应操作箱内的隔板上，隔板7级高度可调；光源由高稳定性供电单元提供电源，4个高能、高稳定性LED光源板均一性照在植物样品上，成像面积可达13×13 cm；控制系统通过千兆以太网与计算机相联，并通过FluorCam软件程序控制和采集分析数据。适用于植物叶片及果实等其它植物组织、整株植物或培养的多株植物、苔藓地衣等低等植物、藻类等，广泛应用于植物包括藻类光合生理生态、植物逆境胁迫生理与易感性、气孔功能、植物环境如土壤重金属污染响应与生物检测、植物抗性检测与筛选、作物育种、Phenotyping等研究。 主要功能特点:1.系统集成于暗适应操作箱内，操作简便、便于移动，既可在实验室内也可在室外进行暗适应成像测量分析2.是世界上唯一可进行OJIP快速荧光动力学成像分析的高端叶绿素荧光技术设备，可得到OJIP快速叶绿素荧光动态曲线及Mo（OJIP曲线初始斜率）、OJIP固定面积、Sm（对关闭所有光反应中心所需能量的量度）、QY、PI（Performance Index）等26个参数3.是世界上唯一可进行QA再氧化动力学成像分析的高端叶绿素荧光技术设备，可运行单周转饱和光闪（STF）叶绿素荧光诱导动态，光强在100µ s内可达到120,000 µ mol(photons)/m² .s4.备功能最全的、可编辑的叶绿素荧光实验程序（Protocols），包括快照模式、Fv/Fm、Kautsky诱导效应、叶绿素荧光淬灭分析（quenching）protocols、LC光响应曲线、PAR吸收与NDVI成像分析、QA再氧化动力学分析、OJIP快速荧光动力学分析及GFP绿色荧光蛋白成像等5.可进行自动重复成像测量分析，预设一个实验程序（Protocols）、测量次数及间隔，系统将自动循环运行成像测量，并自动将数据按时间日期存入计算机（带时间戳）6.具备双色光化学光激发光源，标准配置为红色和白色，可选配红色与蓝色等双波段光化学光，双色光化学光可按不同比例搭配使用，以便实验不同光质对作物／植物的光合效益 7.可选配TetraCam彩色成像模块，最大成像面积20×25cm，用于叶片或植物形态成像分析和叶绿素荧光成像对比分析 技术参数： 1.测量光为617nm可调制红光，持续时间10µ s–100µ s可调； 2.双色光化光，标配为2红光+2白光，可选配2红光+2蓝光或其它波长光源组合， Actinic1光强300µ mol(photons)/m² .s，Actinic2光强2000µ mol(photons)/m² .s；最大光化学光可升级至3000µ mol(photons)/m² .s。双色光化学光可按不同比例搭配使用，以便实验不同光质对作物／植物的光合效益3.饱和光光强可达4000µ mol(photons)/m² .s，可升级至6000 µ mol(photons)/m² .s，QA再氧化分析单周转饱和光闪STF可达120000µ mol(photons)/m² .s4.光源板：4块大型高强度封装LED光源板，每个光源板由36颗LED阵列组成，光源板有效面积与成像面积相同13×13cm，另外还具备一个顶部双色光源（735nm红外光源和650nm红色光源）用于PAR吸收和NDVI成像测量；高强度高稳定性LED提供持续、稳定、均一的光源，不会因为用大量光强弱的LEDs（比如几百个）造成光源不稳定、寿命短等问题（使用大量弱光LED用于弥补每个LED的不足，会造成系统出错率的提高，任何一个LED出现问题都会造成系统的不稳定甚至不能使用）5.测量参数：Fo, Fo’, Fs, Fm, Fm’, Fp, FtDn, FtLn, Fv, Fv'/ Fm'，Fv/ Fm ,Fv',Ft,ΦPSII, NPQ_Dn, NPQ_Ln, Qp_Dn, Qp_Ln, qN, qP，QY, QY_Ln, Rfd, ETR等50多个叶绿素荧光参数及PAR吸收和NDVI植物光谱反射指数（选配），每个参数均可显示2维荧光彩色图像6.具备完备的自动测量程序（protocol），可自由对自动测量程序进行编辑a) Fv/Fm：测量参数包括Fo，Fm，Fv，QY等b) Kautsky诱导效应：Fo，Fp，Fv，Ft_Lss，QY，Rfd等荧光参数c) 荧光淬灭分析：Fo，Fm，Fp，Fs，Fv，QY，ΦII，NPQ，Qp，Rfd，qL等50多个参数d) 光响应曲线LC：Fo，Fm，QY，QY_Ln，ETR等荧光参数e) PAR吸收与NDVI（选配）f) QA再氧化动力学（选配）g) GFP等静态荧光成像测量（选配）h) OJIP快速荧光动力学分析（选配）：Mo（OJIP曲线初始斜率）、OJIP固定面积、Sm（对关闭所有光反应中心所需能量的量度）、QY、PI等26个参数7.高分辨率TOMI-2 CCD传感器a) 逐行扫描CCDb) 最高图像分辨率：1360×1024像素c) 时间分辨率：在最高图像分辨率下可达每秒20帧d) A/D 转换分辨率：16位（65536灰度色阶）e) 像元尺寸：6.45µ m×6.45µ mf) 运行模式：1）动态视频模式，用于叶绿素荧光参数测量；2）快照模式，用于GFP等荧光蛋白和荧光染料测量g) 通讯模式：千兆以太网8.成像面积：13×13cm，可对植物叶片、植物组织、藻类、苔藓、地衣、整株植物或多株植物、96孔板、384孔板等进行成像分析9.7位滤波轮及叶绿素荧光滤波器、PAR吸收与NDVI成像测量滤波器（选配），可根据需要选配其它滤波器（选配）10.QA再氧化动力学成像分析（选配）：可进行STF荧光动力学分析测量，单周转光闪（STF）光强达120000 µ mol(photons)/m² .s in 100µ s11.OJIP快速荧光动力学模块（选配）：时间分辨率达1µ s，可测定分析OJIP曲线与二十几项相关参数包括：Fo、Fj、Fi、P或Fm、Vj、Vi、Mo、Area 、Fix Area、Sm 、Ss 、N（QA还原周转数量）、Phi   _Po 、Psi_o 、Phi_Eo、Phi_Do、Phi_pav、ABS/RC（单位反应中心的吸收光量子通量）、TRo/RC（单位反应中心初始捕获光量子通量）、ETo/RC（单位反应中心初始电子传递光量子通量）、DIo/RC（单位反应中心能量散失）、ABS/CS（单位样品截面的吸收光量子通量）、TRo/CSo、RC/CSx（反应中心密度）、PIABS（基于吸收光量子通量的“性能”指数或称生存指数）、PIcs（基于截面的“性能”指数或称生存指数）12.FluorCam叶绿素荧光成像分析软件功能：具Live（实况测试）、Protocols（实验程序选择定制）、Pre–processing（成像预处理）、Result（成像分析结果）等功能菜单13.客户定制实验程序协议（protocols）：可设定时间（如测量光持续时间、光化学光持续时间、测量时间等）、光强（如不同光质光化学光强度、饱和光闪强度、调制测量光等），具备专用实验程序语言和脚本，用户也可利用Protocol菜单中的向导程序模版自由创建新的实验程序14.自动测量分析功能：可设置一个实验程序（Protocol）自动无人值守循环成像测量，重复次数及间隔时间客户自定义，成像测量数据自动按时间日期存入计算机（带时间戳）15.快照（snapshot）模式：通过快照成像模式，可以自由调节光强、快门时间及灵敏度得到清晰突出的植物样本稳态荧光和瞬时荧光图片16.成像预处理：程序软件可自动识别多个植物样品或多个区域，也可手动选择区域（Region of interest，ROI）。手动选区的形状可以是方形、圆形、任意多边形或扇形。软件可自动测量分析每个样品和选定区域的荧光动力学曲线及相应参数，样品或区域数量不受限制（1000）17.数据分析模式：具备“信号计算再平均”模式（算数平均值）和“信号平均再计算”模式，在高信噪比的情况下选用“信号计算再平均”模式，在低信噪比的情况下选择“信号平均再计算”模式以过滤掉噪音带来的误差18.输出结果：高时间解析度荧光动态图、荧光动态变化视频、荧光参数Excel文件、直方图、不同参数成像图、不同ROI的荧光参数列表等19.暗适应操作箱，内置光源、CCD镜头、滤波轮及滤波器、控制单元、散热装置等，方便暗适应操作，样品平台36x30cm，高度7级可调，样品（整株植物）最大高度可达12cm 20.给光制式：静态或动态21.Bios：固件可升级22.尺寸：471 mm(W)×473 mm (D)×512 mm (H) 23.重量：Appr. 40 kg 24.电源输入：Appr. 1100 W 25.供电电压：90–240 V 配置组成：1.主机系统，包括暗适应操作箱，内置LEDs光源、滤波轮及滤波器、CCD镜头、控制单元、高度可调样品隔板、散热装置等2.高稳定性电源转换器3.FluorCam系统控制与数据分析软件4.笔记本电脑 产地：欧洲 附：其它FluorCam叶绿素荧光成像系统1.FluorCam便携式光合联用叶绿素荧光成像系统：可与LCProSD光合仪、Licor光合仪等联用2.FluorCam便携式叶绿素荧光成像系统：成像面积3.5x3.5cm，具暗适应叶夹及多功能轻便三脚架，可用于实验室或野外测量和监测3.FluorCam便携式Chl/GFP荧光成像系统：为便携式荧光成像系统的扩展版，可同时进行叶绿素荧光成像分析和GFP绿色荧光蛋白成像分析4.FluorCam封闭式叶绿素荧光成像系统：LED光源、CCD荧光监测镜头、控制单元等集成于暗适应操作箱内形成一个完整的主机系统，是世界上唯一可进行QA再氧化动力学和OJIP测量分析的叶绿素荧光成像系统，成像面积13x13cm5.FluorCam封闭式Chl/GFP荧光成像系统：为封闭式叶绿素荧光成像系统的扩展版，可同时进行叶绿素荧光成像分析和GFP绿色荧光蛋白成像分析6.FluorCam开放式叶绿素荧光成像系统：模块式，具备高度可扩展性，可自由选配不同的激发光源及相应滤波器以对叶绿素荧光动态及稳态荧光等进行成像分析，镜头高度可调，成像面积13x13cm7.FluorCam开放式大型版叶绿素荧光成像系统：成像面积可达20x20cm8.FKM多光谱荧光动态显微成像与光谱分析系统：多激发光、多光谱荧光成像与光谱分析，可对叶绿素荧光动态、QA再氧化、OJIP快速荧光动力学进行显微成像分析和光谱分析，还可对GFP荧光、细胞荧光染色等进行显微成像分析9.Fluorcam移动式大型叶绿素荧光成像系统：大型叶绿素荧光成像平台安装在具轮子的支架上，方便移动，成像平台可上下移动，成像面积达35x35cm10.FluorCam样带扫瞄式叶绿素荧光成像系统：大型成像平台可在100－500cm的支架上对样带进行扫瞄成像，标配扫瞄区域长度为400cm，成像平台可沿样带精确定位自动扫瞄，可选配RGB真彩扫瞄成像，从而实现叶绿素荧光成像和真彩成像分析11.FluorCam多光谱荧光成像系统：属多激发光、多光谱荧光成像系统，不仅可对叶绿素荧光进行成像分析，还可对UV紫外光激发F440（蓝色荧光）、F520（绿色荧光）、F690（红色荧光）和F740（红外荧光）进行成像分析用于全方位研究检测植物胁迫与抗性，有标准配置、扩展配置和大型配置3种型号12.PlantScreen叶绿素荧光与RGB真彩自动扫描成像系统：是PlantScreen系列高通量植物表型成像分析系统的基础版，可对叶绿素荧光和植物RGB真彩进行成像分析，以分析检测植物的功能表型和形态表型，自动扫瞄范围为60x129cm，定位定时并得到4维（XYZ三维位置信息和时间信息）测量数据
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    厂商： 北京易科泰生态技术有限公司
    品牌： 捷克PSI
    型号： FluorCam封闭式叶绿素荧光成像系统
    价格： 面议
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  • 农业部学科群项目—— 中国农科院移动式大型叶绿素荧光成像系统安装运行
    易科泰生态技术公司工程师为中国农科院学科群建设项目——FluorCam移动式大型叶绿素荧光成像系统进行了安装调试并顺利通过验收。该系统是农业部一期学科群建设项目购置的大型仪器设备，将用于温室乃至野外植物的光合生理研究、植物表型成像分析（Phenotyping）、植物胁迫生理及抗性筛选、植物优良品种选育、植物生态毒理学研究等。FluorCam移动式大型叶绿素荧光成像系统系国内首次引进，其成像面积达35×875px，是世界上单幅成像面积最大的叶绿素荧光成像系统，可对整株植物及多株植物进行原位实验和叶绿素荧光成像分析。整套系统装配在具备4个轮子的支架上，可在野外自由移动，甚至可以通过自动重复程序实现无人职守自动成像分析测量和监测，成像测量数据自动按时间日期存入计算机（带时间戳），通过触摸屏进行实验操作和数据浏览。镜头及激发光源高度500px–3750px可调，从而适于不同生长类型不同高度植物的原位非损伤荧光成像测量。带有Kautsky诱导效应、荧光淬灭分析等各种通用实验程序（protocols），测量分析参数达50多个，测量样品包括作物、灌木、整株茎叶与果实、地衣及藻类等。同期购置的还有Monitoring FluorPen叶绿素荧光自动监测仪，激发光源、控制单元、检测器、数据采集器等高度集成在一个具防水设计的不锈钢外壳内，可在野外恶劣环境下进行长期无人值守的叶绿素荧光监测，既可以电池供电也使用太阳能板供电，是目前世界上集成度与精密度最高、功能最强大的叶绿素荧光监测模块，内置包括Ft、QY、OJIP、NPQ、光响应曲线等功能最全面的Protocols。可以用于光合活性监测、植物胁迫生理研究与抗性检测、除草剂测试、人工或野外条件下的植物生长情况监测等。
    时间： 2014-11-04
    作者： 易科泰
  • FluorCam叶绿素荧光成像技术应用案例——上海生命科学研究院
    近日，易科泰生态技术有限公司为上海生命科学研究院调试安装一套FluorCam封闭式GFP/Chl.荧光成像系统，该系统具备叶绿素荧光成像分析、GFP绿色荧光蛋白成像分析、PAR吸收与NDVI成像测量分析、实验程序自动运行监测等多项功能模块。上海生命科学研究院青年研究组长、博士生导师Chanhong Kim在苏黎世联邦理工学院（ETH-Zurich）、康奈尔大学博伊斯汤普森研究所（Boyce Thompson Institute at Cornell University）工作期间就已经使用FluorCam叶绿素荧光成像技术进行了大量的研究工作，并先后发表了“1O2-mediated retrograde signaling during late embryogenesis predetermines plastid differentiation in seedlings by recruiting abscisic acid”（PNAS（美国科学院院报），2009）、“Chloroplasts of Arabidopsis are the source and a primary target of a plant-speci?c programmed cell death signaling pathway”（The Plant Cell，2012）等学术论文。2014年，Chanhong Kim博士到上海生命科学研究院工作后，立刻就联系我公司购买了FluorCam封闭式GFP/Chl.荧光成像系统，计划率领他的青年科学家团队运用FluorCam叶绿素荧光成像技术结合特定胁迫因子来筛选拟南芥突变体，并通过Quenching实验程序进一步研究这些突变体光系统中的具体表型变化（Phenotyping）和生理机制，对植物光合作用和抗逆机理进行深入的探索；同时利用该系统绿色荧光蛋白成像分析功能，来定量鉴别检测分析转基因表达。图1. FluorCam封闭式叶绿素荧光成像系统在实验室的工作状态图2. 拟南芥叶绿素荧光Fm（左图）、Fv/Fm（右图）成像分析，图中上半部分为拟南芥野生型，下半部分为突变株，上部选择了3个植株Area 1、2、3，下部选择了3个植株Area 4、5、6，野生型的Fv/Fm远高于突变株图3. GFP成像图，图中发出明亮颜色的植株即为表达了GFP的植株，其颜色越偏向红色，则表明其表达的GFP更多图4：PAR absorptivity／NDVI成像分析（由Ecolab实验室提供）FluorCam叶绿素荧光成像技术由全球知名叶绿素荧光技术专业公司PSI生产，PSI公司最先研制成功并生产叶绿素荧光成像仪器。PSI公司首席科学家Nedbal教授与公司总裁Trtilek博士首次将PAM叶绿素荧光技术与CCD技术结合在一起，研制成功了叶绿素荧光成像技术（Nedbal等，2000），并于1997年为美国华盛顿大学提供了第一台商业FluorCam系统。Nedbal教授也是权威著作《Chlorophyll a Fluorescence, a Signature of Photosynthesis》(Springer, 2009)叶绿素荧光成像技术的作者。Fluorcam叶绿素荧光成像系统是世界上最权威、使用最广、种类最全面、发表论文最多的叶绿素荧光成像仪器，目前易科泰生态技术公司Ecolab实验室有近400篇参考文献供参考查阅。易科泰生态技术公司作为PSI在中国区域的独家代理和技术咨询服务中心，致力于FluorCam叶绿素荧光成像技术的引进推广，以助力于我国植物生理生态与胁迫生理生态研究、植物育种与优良品种筛选、植物表型分析（Phenotyping）、藻类生理生态学研究、污染生态学及生态毒理学研究等，先后引进了FluorCam便携式荧光成像、封闭式荧光成像、开放式荧光成像、移动式大型叶绿素荧光成像系统、FKM多光谱荧光动态显微成像与光谱分析系统、多光谱荧光成像技术、PlantScreen高通量植物表型成像分析系统等；Ecolab生态实验室配备了便携式叶绿素荧光成像系统、FL3500多功能叶绿素荧光仪、FluorPen手持式叶绿素荧光仪、AquaPen手持式水体藻类荧光仪等，并与中科院植物所、中科院海洋所、中科院微生物所、中国农业大学、中国林科院林木遗传育种国家重点实验室等科研单位进行了一系列合作研究实验。欢迎合作研究或来我公司Ecolab实验室做实验。Ecolab实验室联系方式：电话：62615899；邮箱：info@eco-lab.cn, eco-lab@eco-tech.com.cn.
    时间： 2014-12-15
    作者： 易科泰
  • FluorCam 叶绿素荧光成像技术讲座及操作培训班邀请函
    为了进一步促进FluorCam叶绿素荧光成像技术在光合作用、植物发育生物学、植物抗逆生物学以及作物育种研究领域的应用，北京易科泰生态技术有限公司ECOLAB实验室与中国科学院植物研究所光生物学重点实验室，将于2017年4月中旬在植物所举办FluorCam叶绿素荧光成像技术专题讲座与仪器操作培训，将由相关领域的专家重点介绍FluorCam技术及其操作，详细讲解FluorCam技术在植物相关研究领域的应用。诚邀从事植物表型、光合作用、植物胁迫与抗性以及作物育种等领域的科研工作者参加本次培训班。一、会议组织 主办单位：北京易科泰生态技术有限公司ECOLAB实验室，中国科学院光生物学重点实验室 会议地点：北京市海淀区香山南辛村20号 中国科学院植物研究所 会议时间：2017年4月（具体时间请见后续通知） 二、会议主题 FluorCam叶绿素荧光技术介绍 FluorCam叶绿素荧光技术在植物相关研究领域中的应用 FluorCam叶绿素荧光技术操作与示范 三、报告人（持续更新中） 卢从明研究员（中国科学院植物研究所，中国科学院光生物学重点实验室主任） 彭连伟教授（上海师范大学生命与环境学院） 李川技术总监（易科泰生态技术有限公司ECOLAB实验室）四、仪器操作培训与会者将在植物所光生物学重点实验室和ECOLAB实验室实地参观并操作FluorCam仪器设备。16年培训班-FluorCam野外移动式叶绿素荧光成像系统16年培训班-FluorCam封闭式荧光成像系统农科院购置FluorCam大型叶绿素荧光成像平台FluorCam开放式叶绿素荧光成像系统有意参加者可直接回复联系人邮件，后续会有专人跟您联系联系人：曹洋 邮箱：info@eco-tech.com.cn 电话：010-82611269/1572
    时间： 2017-02-23
    作者： 易科泰
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  • 叶绿素荧光显微成像技术在光合作用研究中的应用

    [align=center][size=16px][/size][/align][size=16px] 光合作用是地球上最重要的化学反应，植物、藻类及光合细菌等吸收光能、将[/size][size=16px]CO[/size][font='calibri'][sub][size=16px]2[/size][/sub][/font][size=16px]和水转化为有机物并释放[/size][size=16px]O[/size][font='calibri'][sub][size=16px]2[/size][/sub][/font][size=16px]。获得光能的叶绿素分子从基态跃迁到激发态，激发态的叶绿素分子可通过三种途径释放能量回到基态：推动光化学反应、以热的形式耗散、释放光子产生荧光。这三种途径的总和是一定的，因此叶绿素荧光的变化反映了光化学效率和热耗散能力的变化。叶绿素荧光成像是[/size][size=16px]广泛应用[/size][size=16px]的[/size][size=16px]光合生理研究的重要探针[/size][size=16px]，[/size][size=16px]叶绿素荧光显微成像又将研究尺度进一步拓展到细胞、亚细胞水平。叶绿素荧光技术发展出了很多不同的测量程序，以慢诱导荧光动力学曲线为例，通过测量光（[/size][size=16px]ML[/size][size=16px]）、作用光（[/size][size=16px]AL[/size][size=16px]）、饱和脉冲光（[/size][size=16px]SP[/size][size=16px]）激发样品，记录动力学曲线并计算叶绿素荧光参数[/size][size=16px]，[/size][size=16px]可以用于反映植物光合作用机理和光合生理状况（[/size][size=16px]朱新广[/size][size=16px]，[/size][size=16px]2021[/size][size=16px]）。[/size][size=16px][/size][size=16px] 叶绿素荧光成像技术能记录整个叶片、植株等样品不同区域的荧光动力学分布变化，实现从宏观到微观的光合机理研究。叶绿素荧光成像由于其无损、高通量的技术特征，在光合作用相关突变体筛选领域成为了广泛应用的重要技术，为光合作用机理及抗[/size][size=16px]逆研究[/size][size=16px]提供了强大的技术支持。叶绿素荧光显微成像技术最早出现于[/size][size=16px]2000[/size][size=16px]年，[/size][size=16px]K[/size][size=16px]ü[/size][size=16px]pper[/size][size=16px]等人将叶绿素荧光脉冲调制式激发光源与显微镜结合，首次获得了显微尺度的叶绿素荧光图像（[/size][size=16px]K[/size][size=16px]ü[/size][size=16px]pper[/size][size=16px] [/size][size=16px]et al.[/size][size=16px], 2000[/size][size=16px]）。叶绿素荧光显微成像技术在国外已经展开多方面研究应用，[/size][size=16px]目前国内的叶绿素荧光成像显微研究尚处于起步阶段，多个课题组都[/size][size=16px]正[/size][size=16px]在[/size][size=16px]探索[/size][size=16px]这项技术[/size][size=16px]在[/size][size=16px]不同研究领域中[/size][size=16px]的[/size][size=16px]应用。[/size][size=16px][/size][size=16px] 叶绿素荧光技术[/size][size=16px]适用研究样品微观结构上光[/size][size=16px]合功能[/size][size=16px]的空间差异，例如叶片横截面栅栏组织与海绵组织的差异，[/size][size=16px]C[/size][size=16px]4[/size][size=16px]植物花环结构[/size][size=16px]中维管束鞘细胞与叶肉细胞的差异[/size][size=16px]，藻类中有差异的单个细胞、异形胞[/size][size=16px]等。我们多年来与[/size][size=16px]吉林师范大学、四川省农业科学研究院[/size][size=16px]等[/size][size=16px]单位[/size][size=16px]合作[/size][size=16px]，[/size][size=16px]目前已合作发表的[/size][size=16px]3[/size][size=16px]篇相关论文是国内该领域[/size][size=16px]开创性[/size][size=16px]的应用成果，[/size][size=16px]以叶绿素荧光显微成像的特色优势技术[/size][size=16px]为光合作用的微观[/size][size=16px]探究提供有力支撑[/size][size=16px]。[/size][size=16px][/size][size=16px] Yu[/size][size=16px]等[/size][size=16px]发现[/size][size=16px]狗枣猕猴桃[/size][size=16px]（[/size][size=16px]A[/size][size=16px]ctinidia [/size][size=16px]kolomikta[/size][size=16px]）[/size][size=16px]的白化[/size][size=16px]叶片[/size][size=16px]通过调整叶片结构及基因表达调控，仍然保持了相对较高的光合能力[/size][size=16px]。[/size][size=16px]应用[/size][size=16px]叶绿素荧光显微成像技术[/size][size=16px]比较了[/size][size=16px]白化和绿色叶片栅栏组织、海绵组织的叶绿素荧光参数，[/size][size=16px]揭示了白化叶片海绵组织光[/size][size=16px]合能力[/size][size=16px]增强的机理[/size][size=16px]。[/size][size=16px]绿叶中栅栏组织[/size][size=16px]F[/size][font='calibri'][size=14px][sub][size=16px]v[/size][/sub][/size][/font][size=16px]/[/size][size=16px]F[/size][font='calibri'][size=14px][sub][size=16px]m[/size][/sub][/size][/font][size=16px]（最大光化学效率）[/size][size=16px]更高，而白叶中海绵组织[/size][size=16px]显著增厚，[/size][size=16px]F[/size][font='calibri'][size=14px][sub][size=16px]v[/size][/sub][/size][/font][size=16px]/[/size][size=16px]F[/size][font='calibri'][size=14px][sub][size=16px]m[/size][/sub][/size][/font][size=16px]更高[/size][size=16px]，[/size][size=16px]光[/size][size=16px]合能力[/size][size=16px]增强，补偿[/size][size=16px]了[/size][size=16px]白化的影响，成为叶片光合作用主力组织[/size][size=16px]（[/size][size=16px]Yu [/size][size=16px]et al.[/size][size=16px], 2022[/size][size=16px]）[/size][size=16px]。[/size][size=16px]接下来[/size][size=16px]Chen[/size][size=16px]等又比较了两种猕猴桃白化叶片的光保护策略差异[/size][size=16px]，狗枣猕猴桃的白叶[/size][size=16px]主要通过反射实现光保护，强光下花青素[/size][size=16px]积累，叶片[/size][size=16px]转变为粉色[/size][size=16px]，更有效地保护叶片[/size][size=16px]；[/size][size=16px]而[/size][size=16px]葛[/size][size=16px]枣猕猴桃（[/size][size=16px]A[/size][size=16px]ctinidia[/size][size=16px] [/size][size=16px]polygama[/size][size=16px]）[/size][size=16px]强光下[/size][size=16px]仍为白色[/size][size=16px]，[/size][size=16px]具[/size][size=16px]有更[/size][size=16px]强[/size][size=16px]的叶绿[/size][size=16px]素荧光参数，说明[/size][size=16px]它[/size][size=16px]具有更高的强光适应能力[/size][size=16px]（[/size][size=16px]Chen[/size][size=16px] [/size][size=16px]et al.[/size][size=16px], 202[/size][size=16px]3[/size][size=16px]）。[/size][size=16px]Liu[/size][size=16px]等比较了干旱处理下的玉米叶肉细胞和维管束鞘细胞，发现这两种细胞具有不同的不同光保护策略[/size][size=16px]。对玉米[/size][size=16px]完整叶片的分析显示，[/size][size=16px]随着干旱处理程度增强，[/size][size=16px] [/size][size=16px]F[/size][font='calibri'][size=14px][sub][size=16px]v[/size][/sub][/size][/font][size=16px]/[/size][size=16px]F[/size][font='calibri'][size=14px][sub][size=16px]m[/size][/sub][/size][/font][size=16px]、[/size][size=16px]Φ[/size][font='calibri'][size=14px][sub][size=16px]PSII[/size][/sub][/size][/font][size=16px]（实际光化学效率）[/size][size=16px]降低，[/size][size=16px]NPQ[/size][size=16px]（非光化学猝灭[/size][size=16px]系数[/size][size=16px]）[/size][size=16px]显著升高[/size][size=16px]。进一步应用[/size][size=16px]叶绿素荧光显微成像[/size][size=16px]的分析结果[/size][size=16px]与完整叶片[/size][size=16px]相符合，并且发现[/size][size=16px]与叶肉细胞相比，维管束鞘细胞[/size][size=16px] [/size][size=16px]F[/size][font='calibri'][size=14px][sub][size=16px]v[/size][/sub][/size][/font][size=16px]/[/size][size=16px]F[/size][font='calibri'][size=14px][sub][size=16px]m[/size][/sub][/size][/font][size=16px]、[/size][size=16px]Φ[/size][font='calibri'][size=14px][sub][size=16px]PSII[/size][/sub][/size][/font][size=16px]更低，干旱胁迫后[/size][size=16px]NPQ[/size][size=16px]升高更显著[/size][size=16px]，[/size][size=16px]不同细胞的变化趋势[/size][size=16px]差异[/size][size=16px]表明它们[/size][size=16px]具有不同的光保护策略[/size][size=16px]，[/size][size=16px]维管束鞘细胞中可能具有更强的热耗散能力[/size][size=16px]（[/size][size=16px]Liu [/size][size=16px]et al.[/size][size=16px], 2022[/size][size=16px]）。[/size][size=16px][/size][size=16px] 叶绿[/size][size=16px]素[/size][size=16px]荧光显微成像技术在光合作用的微观研究领域具有独特的技术优势，在[/size][size=16px]光合作用机理研究、环境及毒理胁迫与抗性筛选、优良品系选育等领域[/size][size=16px]具[/size][size=16px]有广阔的应用前景。目前多家单位的科研人员[/size][size=16px]都[/size][size=16px]在[/size][size=16px]探索该技术[/size][size=14px][size=16px]的新应用，我们也正在[/size][size=16px]将该技术拓展到[/size][size=16px]多个新的领域，例如对[/size][size=16px]原生质体[/size][size=16px]以及[/size][size=16px]种子、茎秆等非叶片器官的[/size][size=16px]研究[/size][size=16px]。[/size][/size][font='黑体']参考文献：[/font][font='calibri'][size=13px][1] [/size][/font][font='calibri'][size=13px]朱新广[/size][/font][font='calibri'][size=13px], [/size][/font][font='calibri'][size=13px]许大全主编[/size][/font][font='calibri'][size=13px]. [/size][/font][font='calibri'][size=13px]光合作用研究技术[/size][/font][font='calibri'][size=13px], [/size][/font][font='calibri'][size=13px]上海科学技术出版社[/size][/font][font='calibri'][size=13px], 2021[/size][/font][font='calibri'][size=13px][2] [/size][/font][font='calibri'][size=13px]H[/size][/font][font='calibri'][size=13px]. [/size][/font][font='calibri'][size=13px]Küpper[/size][/font][font='calibri'][size=13px],[/size][/font][font='calibri'][size=13px] [/size][/font][font='calibri'][size=13px]I[/size][/font][font='calibri'][size=13px].[/size][/font][font='calibri'][size=13px] [/size][/font][font='calibri'][size=13px]?etlík[/size][/font][font='calibri'][size=13px], [/size][/font][font='calibri'][size=13px]M[/size][/font][font='calibri'][size=13px].[/size][/font][font='calibri'][size=13px] [/size][/font][font='calibri'][size=13px]Trtílek[/size][/font][font='calibri'][size=13px],[/size][/font][font='calibri'][size=13px] et al. [/size][/font][font='calibri'][size=13px]Photosynthetica[/size][/font][font='calibri'][size=13px], 2000, 38, s553-570 [/size][/font][font='calibri'][size=13px][3] [/size][/font][font='calibri'][size=13px]M[/size][/font][font='calibri'][size=13px].[/size][/font][font='calibri'][size=13px] [/size][/font][font='calibri'][size=13px]Yu, [/size][/font][font='calibri'][size=13px]L[/size][/font][font='calibri'][size=13px]. [/size][/font][font='calibri'][size=13px]Chen, [/size][/font][font='calibri'][size=13px]D[/size][/font][font='calibri'][size=13px].[/size][/font][font='calibri'][size=13px] H[/size][/font][font='calibri'][size=13px]. [/size][/font][font='calibri'][size=13px]Liu[/size][/font][font='calibri'][size=13px],[/size][/font][font='calibri'][size=13px] et al. [/size][/font][font='calibri'][size=13px]Front. Plant Sci.[/size][/font][font='calibri'][size=13px], 2022, 13: 856732 [/size][/font][font='calibri'][size=13px][4] [/size][/font][font='calibri'][size=13px]L[/size][/font][font='calibri'][size=13px].[/size][/font][font='calibri'][size=13px] Chen[/size][/font][font='calibri'][size=13px],[/size][/font][font='calibri'][size=13px] D[/size][/font][font='calibri'][size=13px]. [/size][/font][font='calibri'][size=13px]Q[/size][/font][font='calibri'][size=13px].[/size][/font][font='calibri'][size=13px] Wen[/size][/font][font='calibri'][size=13px],[/size][/font][font='calibri'][size=13px] G[/size][/font][font='calibri'][size=13px]. [/size][/font][font='calibri'][size=13px]L[/size][/font][font='calibri'][size=13px].[/size][/font][font='calibri'][size=13px] Shi[/size][/font][font='calibri'][size=13px],[/size][/font][font='calibri'][size=13px] [/size][/font][font='calibri'][size=13px]et al.[/size][/font][font='calibri'][size=13px] [/size][/font][font='calibri'][size=13px]Physiol. Plant.[/size][/font][font='calibri'][size=13px], 2023, [/size][/font][font='calibri'][size=13px]175:[/size][/font][font='calibri'][size=13px] [/size][/font][font='calibri'][size=13px]e13880[/size][/font][font='calibri'][size=13px][5] [/size][/font][font='calibri'][size=13px]W[/size][/font][font='calibri'][size=13px].[/size][/font][font='calibri'][size=13px] J[/size][/font][font='calibri'][size=13px].[/size][/font][font='calibri'][size=13px] [/size][/font][font='calibri'][size=13px]Liu, [/size][/font][font='calibri'][size=13px]H[/size][/font][font='calibri'][size=13px].[/size][/font][font='calibri'][size=13px] [/size][/font][font='calibri'][size=13px]Liu, [/size][/font][font='calibri'][size=13px]Y[/size][/font][font='calibri'][size=13px].[/size][/font][font='calibri'][size=13px] E[/size][/font][font='calibri'][size=13px].[/size][/font][font='calibri'][size=13px] [/size][/font][font='calibri'][size=13px]Chen[/size][/font][font='calibri'][size=13px],[/size][/font][font='calibri'][size=13px] et al. [/size][/font][font='calibri'][size=13px]Front. Plant Sci.[/size][/font][font='calibri'][size=13px], 2022, 13: 885781[/size][/font]

  • 叶绿素a的测定

    叶绿素a存在于一切独立营养植物中，是一种能将光合作用的光能传递给化学反应系统的惟一色素。因此，叶绿素a就成为水中有机物的源泉。通过测定叶绿素a，可以了解海洋、湖泊和河流中植物性浮游生物的现存量和基础生产量，可掌握水体中藻类现存量。因此，叶绿素a指标是评价水体富营养化程度最直接有效的方法，也是目前科学地预测其发展趋势的有效方法。根据实测资料分析，当叶绿素a含量从常量上升至10 mg／m3以上，并有迅速增加的趋势，就可预测水体即将发生富营养化。(一)叶绿素a的分光光度法测定在一定量的水样中添加1％碳酸镁悬浮液1 mL，充分搅匀，用玻璃纤维滤纸或微孔滤膜过滤。若不能立即提取，将带样品的滤膜放人冰箱保存(1～2 d)。将载有藻类的滤膜放人研钵中，加入90％丙酮6～7 mL，研磨至呈糊状，再用90％丙酮溶液洗入具塞刻度离心管中，密封，放置暗处静置萃取6～20 h。以3500～4000r／min转速离心lO～15 min，取上清液转入1 cm比色皿中，以90％丙酮溶液为参此，于波长665 nm和750 nm处测吸光度，然后加入几滴l mol／L盐酸酸化，于波长665 nm和750 nm处再测吸光值。叶绿素a浓度计算公式为：Chla=27．3×665一E750)一(A665一A750)]×V丙酮／V水样式中：Chla——叶绿素a含量(μg／L)；E665,E750——丙酮萃取液分别于波长665 nm和750 nm的吸光度；A665,A750——丙酮萃取液酸化后分别于波K 665 nm和750 nm的吸光度；V丙酮——丙酮萃取液的体积，mL；V水样——水样过滤的体积，L。(二)叶绿素a的荧光法测定适合于藻类较少的贫营养湖泊或外海洋中的叶绿素a的测定。基本原理是，当丙酮提取液经紫外线照射时，叶绿素a显现其固有的红色荧光特征，其浓度与荧光强度存在一定的规律性，因此可定量测定叶绿素a的含量。由于所用的光源强度高，故荧光法的灵敏度比分光光度法约高两个数量级。[/td][/tr][/table]

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  • 荧光显微成像系统配件
    荧光显微成像系统配件和欧洲进口的显微成像系统,可用于研究细胞形态、荧光探针检测（GFP）、荧光共振能量转移(FRET)和快速分子过程。荧光显微成像系统配件集成方案 使用的现代荧光成像技术极大得帮助科研人员研究细胞形态、荧光探针检测 量转移和快速分子过程。 提供实验所需的曝光时间，根据相机的设置 有效集成并优化同步各种部件 显微成像系统集成方案 已经成为研究活细胞和分子结构比不可少的科研工具 能够以相机的最大速度连续采集一系列图像 可以产生每秒幅的比率图像 在更短的时间内获得更好的实验数据 荧光显微成像系统配件 可编程控制的光源 时成像控制单元 显微成像系统科研型相机 显微镜适配器 成像软件和工作站 价值尽量减少光毒性 显微成像系统特点 时序控制准确： 满幅图像帧频最高可达图像分析灵活： 非常适合单个细胞或一组活细胞的动态过程的研究 荧光显微成像系统配件特点 图像采集和传输的控制达到微秒精度图像采集快速： 软件具有多维图像分析功能和各种应用模块 三维成像要求在轴上能够快速成像，才能获得重建数据 孚光精仪是全球领先的进口科学仪器和实验室仪器领导品牌服务商，产品技术和性能保持全球领先,拥有包括凝胶成像仪在内的全球最为齐全的实验室和科学仪器品类，世界一流的生产工厂和极为苛刻严谨的质量控制体系，确保每个一产品是用户满意的完美产品。 我们海外工厂拥有超过3000种仪器的大型现代化仓库，可在下单后12小时内从国外直接空运发货，我们位于天津保税区的进口公司众邦企业（天津)国际贸易公司为客户提供全球零延误的进口通关服务。 更多关于显微成像系统价格等诸多信息，孚光精仪会在第一时间更新并呈现出来，了解更多内容请关注孚光精仪官方网站方便获取！
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  • 化学发光成像系统配件
    化学发光成像系统配件同时具有化学发光成像和荧光成像功能，也是一套多功能免疫印迹成像系统。化学发光成像系统配件具有超高灵敏度制冷CCD相机和超快镜头，为用户提供超高灵敏度的多功能化学发光成像和荧光成像。 化学发光成像系统配件特点 三阶peltier制冷CCD相机，可制冷到室温-60℃工作，确保获得高质量图像 CCD相机分辨率高达2048x2048像素 配备超快镜头 多波长荧光灯光源 超级紧凑设计，方便操作 图像采集软件方便使用，图像分析软件功能强大 化学发光成像系统配件应用 化学发光成像:Western lightning, ECL, ECL plus, CDP star, Super signal, CSPD, lumiGlo 核酸检测，溴化乙锭，SYBR gold, SYBR Green, SYBR safe, GelStar, Fluorescein, Texas red 蛋白质检测：Coomassie blue, Silver Star, Sypro Red, Sypro Orange, Pro-Q Diomand, Deep Purple。 化学发光成像系统配件分析软件：获取凝胶图像, 控制光源镜头和相机工作 自动识别凝胶带数和背景，增加或删除凝胶带，调节或移动任意凝胶带 密度对比，扫描制定凝胶泳道，给出扫描曲线，泳道中的峰值和密度 计算凝胶带的迁移率，分子重量电泳，碎片尺寸和IEF（RF值） 化学发光成像系统配件参数 CCD尺寸：15.2*15.2mm 像素：2048x2048像素， A/D值：16 CCD温度：室温下-60℃ 镜头： 25mm, F0.95超快镜头 光源： EPI-White LED灯 软件：采集，分析软件 可选配件 荧光灯：365nm, 395nm, 460nm, 490nm, 530nm, 630nm 滤波片：530nm, 590nm, 630nm, 670nm. 孚光精仪是全球领先的进口科学仪器和实验室仪器领导品牌服务商，产品技术和性能保持全球领先,拥有包括凝胶成像仪在内的全球最为齐全的实验室和科学仪器品类，世界一流的生产工厂和极为苛刻严谨的质量控制体系，确保每个一产品是用户满意的完美产品。 我们海外工厂拥有超过3000种仪器的大型现代化仓库，可在下单后12小时内从国外直接空运发货，我们位于天津保税区的进口公司众邦企业（天津)国际贸易公司为客户提供全球零延误的进口通关服务。 更多关于化学发光成像系统参数、化学发光成像系统应用等诸多信息，孚光精仪会在第一时间更新并呈现出来，了解更多内容请关注孚光精仪官方网站方便获取！
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    钙离子成像系统配件是测量显微镜下的生物样本中荧光强度的变化仪器高速钙成像系统,兼具高灵敏度和高速度的优势钙离子成像系统配件有单探测器和双探测器两种配置，分别对应于单发射和双发射实验，并且为比例测量提供特殊的双激发模式。钙成像系统特别适合： 测量或双发射实验 高灵敏度或高速实验 FRET测 无缝对接荧光和电生理学的实验是测量荧光强度变化的高速钙成像系统，可用于钙离子浓度测,钙离子成像.钙离子成像系统配件基本配置包括可编程控制光源(用于安装到显微镜上)取景器（用于选择测量区域）荧光探测器（基于光电二极管技术）控制单元（具有信号处理功能）对于采集速度大于1KHz的实验，可使用光电倍增管替代光电二极管以满足高速测量的要求，但是这仅适用于单发射钙离子成像系统配件配置方案单通道荧光测光系统配置光源（多色光源rome V）取景器（配带相机和显示器）取景器显微镜适配器探测器配带控制单元一个或多个双发射滤波片立方体一个或多个双发滤波片组件钙离子成像系统配件特色取景器控制测量区域测量区域的大小和位置可通过取景器的视场自由定位视频可视化调节测量区域同时进行样品荧光测量和红光可视化测量区域重叠显示在样品的发射图像上光电二极管探测---高灵敏度且承受过度曝光具有超高灵敏度和极低噪音，量子效率高达97％耐用不怕过度曝光最大采集速率高达1KHz，使用光电倍增管可获得更高的速度控制单元带有荧光探测模块---简化数据采集钙离子成像系统配件应用 测量分子内离子浓度（钙离子，镁离子，钾离子，PH等）FR ET测量单波长染料不需要空间分辨率的所有荧光测量
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