RNA样品中RNA完整性检测方案(生物芯片)

智能文字提取功能测试中

● ● RNA完整值(RIN)-RNA质量控制标准化 应用 Odilo Mueller Samar Lightfoot Andreas Schroeder 摘要 评估 RNA完整性是获得有意义基因表达数据的第一个关键步骤。采用完整RNA是成功微功列或 qRT-PCR分析的关键要素。 Agilent 2100 生物分析仪系统和RNA试剂盒在协助研究者确定 RNA质量方面发挥重要作用。Agilent 2100 生物分析仪系统上生成的谱图包括浓度信息，允许直观检查RNA完整性，并生成核糖体比率。本应用简报描述的新软件算法开发用于从生物分析仪电泳图提取 RNA 样品完整性的信息。 Agilent Technologies 前言 确定 RNA起始材料的完整性是基因 表达分析中的一个关键步骤。Agilent 2100 生物分析仪系统及相关的 RNA 6000 Nano 试剂盒和 Pico 试齐盒已成为 RNA 质量评估和定量的标准1.2。在精密加工的芯片上利用电泳分离，分离RNA样品，并随后通过激光诱导荧光检测法检测。生物分析仪软件生成电泳图和凝胶样图像，并展示多种结果，如样品浓度和核糖体比率。电泳图提供了RNA 样品质量的详细直观评估结果。然而，依赖人工目视解释数据的方法具有内在缺陷。此前，研究者们已经将核糖体比率在平板凝胶分析中并作为特征在生物分析仪软件中用来表征 RNA 完整性的状态。采用核糖体比率的总 RNA样品平板凝胶分析通常得到不准确的 RNA完整性评估结果。通过显示 RNA 片段大小分布的详细画面， Agilent 2100 生物分析仪系统提供更好的 RNA 完整 性评估结果。 RNA降解是一个逐渐的过程。随着降解推进(图1)， 18S/28S核糖体条带比减小，而两个核糖体峰和下 位内标之间的基线信号增大。生物分析仪软件自动生成 18S/28S 核糖体亚基的比率。尽管核糖体比率在确定凝胶电泳中样品降解程度方面发挥重要作用，但 Agilent 2100 生物分析仪系统中更详细的分析表明，该比率未充分描述样品完整性。 为了将 RNA 完整性解释过程标准化，；， RIN 软件算法针对 Agilent 2100 生物安捷伦科技有限公司已经推出一种 分析仪系统中用真核生物物RNA新的RNA质量评估工具。开发 RNA Nano 分析法采集的样品开发。输完整值 (RIN)旨在消除 RNA质量控 入数据包括来自三个哺乳动物物种制中的个人解释。它将完整电泳图 (人类、小鼠和大鼠)的不同组织 纳入考量。基于1至10的编号系统，RIN 软件算法可将真核生物总 RNA分类，其中1代表降解最严重的情况并且10代表最完整。通过这种方式，有助于解释电泳图，令样品比较成为可能，并确保实验的重复性。 RIN工具的开发 图1 总RNA样品经过不同时间降解，并且在 Agilent 2100 生物分析仪系统上使用真核细胞总RNA Nano 分析法分析所得的样品。随着降解推进，可以观察到向较短片段大小方向偏移 中约1300分总 RNA样品，所有样品的完整程度各不相同。RNA 样品的分类由应用专家手动进行，他们将每份总RNA样品分类至1-10的预定编号系统。图2展示了不同 RIN类别的代表性电泳图(编号分别为10、6、3、2)。 为开发 RIN算法，采用了神经网络等自适应学习工具(工具由Quantiom Bioinformatics 提供)。这些工具允许确定可以从电泳图提取的关键特征。这些特征是可以采用合适积分仪分析的电泳图组成部分。它们可以是信号面积、强度、比值等。图3中列出电泳图的重要要素。它们包括不同的区域(前区、5S区、快速区、中区、前体区、后区)和峰(标准品、18S、28S)。 RIN 可视化 先前版本生物分级软件中存在的数据可以同样存在于下一版 Expert 软件中，例如 RNA 面积、RNA浓度和rRNA比率。 RIN软件包括 RIN直(图4)，该值可以表述为小数或整数。RIN值可以在“全局高级”设置下的“设点浏览器”中的“分析性质”选项卡中从小数变为整数。如果软件在某些区域发现意外的峰或信号，可能无法计算 RIN 值。 图2 用于调试RNA完整值(RIN)软件的样品电泳图。样品为完整样品 (RIN 10) 至降解样品(RIN 2) 图3 详述提示 RNA质量的各区域的电泳图 这将产生提示已检测到异常的错误消息(列在软件的错误选项卡中)。异常包括基基组 DNA污染、鬼峰、尖峰和波浪状基线。异常可以分为两类：关键和非关键。非关键异常(如后区的尖峰)将导致计算RIN值，而关键异常(如快速区的尖峰)将导致 RIN 值无法计算。如果认定某个异常非关键(如基因组污染，此事应当进行 DNA酶消化以获取有意义的数据)，对于已经标记的样品，仍可以通过在“设点浏览器”的高级设置中提高异常阈值设定，计算RIN值(图5)。异常阈值检测的最大值为1。错误消息的描述将与适当阈值相对应。 利用 RIN 得到的结果 开发 RIN 软件以消除依赖用户的RNA 质量解释过程。总RNA样品的表征基本上与仪器、样品浓度和操作者无关，从而允许跨不同实验室比较样品。 RNA完整性 图6展示三份完整程度状态不同的RNA 样品。 RIN 工具赋予三种不同命名，代表相应的完整性。在样品与调试算法时所用样品不同的大型验证研究期间，得到了可靠的样品分类。 图4 Agilent 2100生物分析仪系统 Expert软件中的RIN可视化。“结果”选项卡中显示 RIN值，而“错误”选项卡将包含在 RIN 未计算情况下有用的信息 一3 ：RNA Integrity Number Pre Region Anomaly Th... 0.5 55 Region Anomaly Thr... 0.46 Fast Region Anomaly T... 00.56 Inter Region Anomaly T... .00.46 Precursor Region Anom... .00.46 Post Region Anomaly T... 0.45 Baseline Anomaly Thres...0 0.51 Ribosomal Ratio Anomal... .00.61 Unknown Sample Type... 0.58 Marker Anomaly Thresh... .00.54 Single Decimal Represe... X 图5 改变异常阈值和 RIN 单位小数表示。如果分析期间已经检测到关键异常，则在许多情况下仍可以通过提高阈值(最大值为1)计算RIN值。可以在“错误”选项卡中找到关于异常的信息 核糖体比率 图7显示了在三台不同仪器上分析的同一份人脑 (Ambion， Inc.) 总 RNA样品，并且显示了仪器1和仪器3的代表性电泳图。将采用生物分析仪软件生成的核糖体比率与 RIN 值比较。对于36份样品， 与 RIN 值相比，采用核糖体比率时变异程度较大。 RIN计算值的变异系数为1.4%，而核糖体比率的变异系数为5.1%。谨记这些 CV值指向相同样品。当纳入来自不同物种和组织的样品时，发现核糖体比率的 CV值显著增大。 分析不同稀释度的样品时，获得了类似图像(图8)。将小鼠脑总 RNA稀释为三个不同浓度：25ng/pL、100ng/pL 和 500 ng/pL。对于测试的108份样品中， RIN值大幅度优于核糖体比率。RIN 的变异系数为3%，而核糖体比率的变异系数则为22%。应当指出，低于 25ng/pL时，不能获得准确的RIN 值。对于大于50 ng/pL 的样品浓度，获得最佳结果。 图7 在三台不同仪器上分析36析总 RNA 样品。将 RIN与核糖体比率比较。 RIN 工具的 CV 显著低于核糖体比率 图8 检验不同稀释程度的同一份 RNA样品品，以狭窄限值范围获得相同的 RIN 值，而核糖体比率显示重现性差得多 5 利用 RIN RIN 是测量 RNA 完整性的一款强大的新工具。图9中的图示给出了RIN 的最佳实际使用案例。作为第一步，应当验证 RIN值(图9A)。这可以通过将 RIN 值与特定下游实验如微阵列分析或RT-PCR 关联来进行。可以利用这个关联步骤在成功的下游实验和失败的实验间建立RIN阈值。可以在现有生物分析仪数据集合(如可获得)上进行此步骤。在已经建立阈值后，这个值可以用于标准RNA质量控制程序(图9B)。RIN 高于阈值的所有样品通过 QC 检验，而丢弃 RIN 低于阈值的样品。如果重要实验参数变更(例如，研究不同的生物、使用不同类型的微阵列、采用不同的探针集等)，则应当重复验证 RIN的关联步骤。截至目前，已采用真核生物总 RNANano 分析法检验 RIN 算法。 RIN局限性 RIN 旨在提供明确的 RNA完整性评估结果。给出了样品完整性的衡量标准，它可用于直接比较运输前后的样品，或用于比较不同实验室间的样品。最重要的是，它可以用来确保基因表达实验的重复性，只要涉及样品提取步骤。然而，在无前期验证工作的情况下， RIN 不能预测基因表达数据的效能。例如，份样品可能过度降解而无法进行全基因组微阵列实验，但可能产生良好的 RT-PCR数据。为了有效利用RIN，必须进行必要的关联工作。 图9 A. 将 RIN 值与下游实验(例如微车列或 RT-PCR) 关联并确定获得有用基因表达结果的阈值B.在已经进行初始关联实验并已经设定数据阈值后，RIN 值可以用于丢弃在 Agilent 2100 生物分析仪系统中未通过样品 QC的样品 (RIN值低于阈值) 参考文献 致谢 我们已经设计出一款能够比核糖体比率更好评估 RNA 质量的软件算法。 RIN 工具是 RNA完整性评估标准化的重要环节。研究者不再受困于总RNA的主观分类。通过进行关联实验，可创建阈值以确保实验的重复性。，已经发现 RIN 工具基本上没有仪器变异性及浓度变异性，因此有助于仪器间及实验室间样品的比较。 1. "Quantitation comparison of total RNAusing the Agilent 2100 bioanalyzer， ribo-green analysis， and UV spectrometry" (采用 Agilent 2100 生物分析仪、RiboGreen 分析试剂和紫外光谱对总RNA进行定量比较)，安捷伦应用简报，出版号5988-7650EN，2002 2. ( "A microfluidic system for high-speedreproducible DNA sizing and q uantita- tion"， Electrophoresis， 21(1)， 128-34， 2000 ) 3. ( "Advancing the quality control methodology to asses isolated total RNA and generated fragmented cRNA" (通过改进质量控制方法评估游离 总RNA以及生成的 cRNA 片段， 安捷伦应用简报，出版号 ) 5988-9861EN，2003 ( 我们要特别感谢合作伙伴 AmbionInc.、德国基因组研究资源中心 (RZPD) 以及 Quantiom Bioinformatics。 我们还要特别感谢对 RIN 算法进行 内部测试并提供宝贵意见的所有研究人员。 ) Odilo Mueller 是 LabChip 核酸试剂盒的分析产品经理， Samar Lightfoot是核酸分析支持生化专家， AndreasSchroeder 是软件专家，以上三位均任职安捷伦科技公司(德国瓦尔德布隆)。 www.agilent.com/chem/labonachip 查找当地的安捷伦客户中心： www.agilent.com/chem/contactus-cn LabChip 是 Caliper Life Sciences，Inc. 在美国及其他国家/地区的LabChip 注册商标。 免费专线：800-820-3278，400-820-3278(手机用户) 仅限研究使用。不可用于诊断目的。 本文信息如有变更，恕不另行通知。 联系我们： LSCA-China_800@agilent.com 版权所有C 2016安捷伦科技有限公司。保留所有权利。除根据版权法允许的情形外，未经书面许可，不得复制、改编或翻译。 在线询价： www.agilent.com/chem/erfq-cn 2016年1月21日，中国出版出版号5989-1165CHCN Agilent Technologies     摘要    评估RNA 完整性是获得有意义基因表达数据的第一个关键步骤。采用完整RNA 是成功微阵列或qRT-PCR 分析的关键要素。Agilent 2100 生物分析仪系统和RNA 试剂盒在协助研究者确定RNA 质量方面发挥重要作用。Agilent 2100 生物分析仪系统上生成的谱图包括浓度信息，允许直观检查RNA 完整性，并生成核糖体比率。本应用简报描述的新软件算法开发用于从生物分析仪电泳图提取RNA 样品完整性的信息。    前言    确定RNA 起始材料的完整性是基因表达分析中的一个关键步骤。Agilent 2100 生物分析仪系统及相关的RNA 6000 Nano 试剂盒和Pico 试剂盒已成为RNA 质量评估和定量的标准1,2。在精密加工的芯片上利用电泳分离，分离RNA 样品，并随后通过激光诱导荧光检测法检测。生物分析仪软件生成电泳图和凝胶样图像，并展示多种结果，如样品浓度和核糖体比率。电泳图提供了RNA 样品质量的详细直观评估结果。然而，依赖人工目视解释数据的方法具有内在缺陷。此前，研究者们已经将核糖体比率在平板凝胶分析中并作为特征在生物分析仪软件中用来表征RNA 完整性的状态。采用核糖体比率的总RNA 样品平板凝胶分析通常得到不准确的RNA 完整性评估结果3。通过显示RNA 片段大小分布的详细画面，Agilent 2100 生物分析仪系统提供更好的RNA 完整性评估结果。    结论    我们已经设计出一款能够比核糖体比率更好评估RNA 质量的软件算法。RIN 工具是RNA 完整性评估标准化的重要环节。研究者不再受困于总RNA 的主观分类。通过进行关联实验，可创建阈值以确保实验的重复性。已经发现RIN 工具基本上没有仪器变异性及浓度变异性，因此有助于仪器间及实验室间样品的比较。