毛细管区带电泳无峰？？？如何解决？---找到原因！

直接帮你把图贴上来，方便大家看。

电流太小了，特别是硼酸的，提高浓度试试。可以参考下文献，看人家用的什么内径的管子还有用多大的浓度。
另外，当buffer的pH=pI的时候，蛋白质是不带电的，这样的话即使出峰也有可能跟其他中性物质混在一起分不开。

个人很不喜欢SDS，这个东西会把迁移时间拖长峰变宽，而且不容易控制重现性。当然，你既然用了，条件就要摸索才行。有时候只是因为你跑的时间不够，峰还没出来就被你停掉了。

谢谢一楼帮我贴图。昨天搞了老半天不知道怎么弄上去，主要是电脑太慢了。。。
看了一些文献，一般buffer用的浓度也不是太高，20,50,100mM不等；毛细管主要有50和75两种粒径的，长度40,50cm不等；分离时间的话就不太清楚了。不知道各位一般是多长时间的。我做的是一个多聚体的酶和一个peg化的样品

既然有文献怎么会不知道时间？难道文献里居然一个图都没有？不同内径的管子对应不同的浓度，实在不行自己摸索。酶就是蛋白质的一种，可以借鉴蛋白质的分离模式。蛋白质的分离用等电聚焦电泳的比较多，当然也有用SDS的胶束电动色谱，但是如果用的silica-fused capillary吸附比较厉害，可以考虑用其他无胶筛分模式和动态涂敷的方式。

CE-SDS楼主是选的胶束电动色谱么？如果是这样建议减少SDS的量，变成添加有机试剂的形势，这样试试看

我用Test A测试Test B，也是什么峰也没有。工程师说可能是柱子处理的问题。我是按照论坛里一个帖子上说的，用1 N NaoH/30min+1N Hcl/30min+0.1N NaoH 30min+水+buffer，处理的。不知道这样有什么不对

柱子的前处理影响没那么大的。

这个我就是在很不理解了，为什么连test试剂的峰都不出，实在想不出原因。今天打算用BECKMAN的柱子试试

问题解决了就好。非常感谢你回来反馈和跟进，相信不少网友也能从中受益。