【讨论】大家在日常的检测中都是如何考察基质效应的

偶还是个新手，先说说我设想的基质效应吧，就是不加内标和样品，将血浆处理，最后加内标和样品。与加到流动相里的内标和样品比较。好像应该都是这么做滴
至于楼主讨论的问题，还要看看专家们是怎么回答滴

应助达人

我们是用外标法，一般考虑基质效应是在加标回收被基底的干扰太严重，不容易良好计算，而且通过变换前处理方法（SPE柱净化等）没办法解决基底的干扰的时候，就考虑用基质加标来平衡基质效应。

基质效应产生的原因：一般认为可能源于待测组分与生物样品中的基质成分在雾滴表面离子化过程的竞争 。其竞争结果会显著地降低(离子抑制)或增加(离子增强)目标离子的生成效率及离子强度，进而影响测定结果的精密度和准确度。

我们做生物样品是这样评价基质效应的一般是1）用流动相配制高中低三个浓度的待测物，并加入内标，测得响应值； 2）空白血浆提取后加入与1)相同浓度的待测物和内标，测响应值
基质效应 ME%=相应值2/相应值1×100％
这样，不同浓度的待测物的基质效应和内标的基质效应均可得到。
如果是有机溶剂提取，则很简单，只要把准备作为1）组进样的溶液加到空白血浆提取吹干后的管子里，振荡离心一下进样就可以了，加入的体积就是复溶时的体积；
如果时蛋白沉淀，则复杂一些。就是待测物和内标的混合物加入相同体积生物样品基质与其对比的基质后测相应值，前者的结果就是2，需把空白血浆按比例加入沉淀剂，离心后取上清加入即可；后者的结果就是1，只把空白血浆换成水再加入沉淀剂即可。
一般基质效应最好做5－6份（当然越多越好，但是考虑到实际操作，5－6份比较现实）不同来源的空白基质，这样可以考查待测物在不同基质中的介质效应情况，如果介质效应在不同浓度，不同基质中基本一致，且不影响样品的测定，则个人认为有基质效应也没有关系，因为只要样品在标准曲线和样品中的基质效应一致，则用其定量也是可以的。如果不一致，则最好避免或者减轻基质效应。
减轻基质效应的方法主要有：改变前处理方法；改善色谱条件（尽量把峰往后推，保留时间靠前，比较容易受基质效应的影响；如果有切换阀，最好把样品峰出峰前一分钟之前的都切换调）；改用APCI源（ESI源比较容易受基质效应影响）等。

你说的这个其实我看过，论坛里一些关于基质效应的帖子，上面说的基质效应产生的原因就是与其原理相关的，在处理生物样品的时候是不可能不带入离子或者引起待测目标物环境改变的。
里面说的评价是加了内标的情况，而很多情况其实是不加内标的，而且说的主要是血清，那做的动物可食性组织中药物的检测呢，“不同浓度的待测物的基质效应和内标的基质效应均可得到”，如何得到，将内标也参与其中呢，还是分别考察的，使用外标的方式计算的基质效应？？

减轻基质效应的方法，理论上讲好像说的通，但是实际上做试验却不是这样的，即使你样品处理的在干净，实际添加样品所得响应也不会与相应浓度标准溶液样品响应值一样。APCI源用的是很少的，基本用的都是ESI，不可能因为这个就还源。

计算的时候是分别计算的，样品算自己的基质效应，内标算自己的基质效应。
不同浓度的基质效应，我们是做高、中、低三个浓度的基质效应，比较这三个浓度的基质效应，对于我们做生物样品来说，基质效应没有一个确定的值，即比值一定要大于或者小于多少，只是不同浓度不能相差太大，否则我们的定量会不准确，就需要改进方法。

而且做基质效应我们需要做6份不同来源的基质，向你们做组织，就要考查不同来源的6份组织的基质效应，每份来源做高中低三个浓度，每个浓度至少3个样品。所以做基质效应是非常烦琐的。

基质效应的考察，空白样品的提取所取样品量和定容体积需要跟实际样品检测的操作一样吗？可否提取定容后，取少量稀释，这样就可以做几份平行考察而不用提取多次了。

显然不行，样品里面的成分经这么一弄就变化了还怎么比较啊，使得原本扑朔迷离的问题变得更加扑朔迷离了，

我们用的是外标法，一般解决就是简单的用空白提取液配置标准品然后外标定量，基本上一批样品就要配几个标品

我最近做的试验中也遇到了基质效应的问题，不过我用的是同位素内标法。四个目标物中有两个有同位素内标，两个没有，通过实验，我发现在不同浓度的基质下（基质浓度相差50倍，我做了5个水平）内标与目标物受基质的影响很接近，例如A物质受基质影响，响应降低45%，内标受基质影响，响应降低46%.那麽，是否可以说明我的实验中通过内标校正，基质效应已不影响定量分析的准确性？