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我是做原吸的，不要太迷信专家的话或是领导的话，有时候只是经验之谈，很容易进了死胡同。我刚到单位就做原吸，我把科长的话当成是金科玉律了，她说什么我就信什么，结果好多关键的地方都是错的。比如土壤消解，由于有机质的存在，坩埚壁上会有黑圈，按照国标上浓厚的高氯酸就能把黑圈氧化掉，可我的科长却说是HF能氧化掉黑圈。由于很多现象上的认识分歧，造成我消解的样品不完全。但她总是阻碍我用实验去验证下自己的观点，说我不相信过来人。后来她休产假了，我也把我的问题搞清楚了。
总结，不能迷信经验之谈，实验的每个步骤要搞清原理，多问、多看、多思量。国标或行标给出的方法、现象及步骤先后都是有原理支持的，不是某个人或一群人经验给出的。但是每个人的手法不同，造成实验现象和结果的不同。比如说在消解食品中，每个人对实际温度的把握不同，消解的结果就不一样。
碰见陌生的实验，先要搞清原理，用原理指导实验，这样才不会盲目。


话说回来，我之所以能很快进入角色，还得感谢我的科长。虽然在部分观点上我们存在问题，但是没有她的亲手指导，靠自己摸索还得用一段时间的。
学习工作中，好的老师和领导真的很难找的。希望大家能遇到好的领路人。

应助达人

同感~！支持。

进样后电流下降是我做毛细管电泳遇到到的第一个问题

问题原因和解决办法：由于缓冲液一般都是水相，若样品用纯有机溶剂溶解，则进样时可能会出现电流不断下降的情况，可用缓冲液或水来稀释样品，或往缓冲液中加入一定量有机溶剂解决此问题

第二个问题是稀释后进样，峰小且很难看，或许是稀释比例的缘故吧，目前正在慢慢摸索中，等解决后再发上来

在此抱怨一下：贝克曼的电极总是被顶弯，超烦人的啊！！！！！

我做的是整体柱，在运行时基线不稳定，而且有时样品会吸附在柱子上不出来，此时，应先用缓冲溶液多冲洗一会，在有就是需要加入一定量的有机溶剂来调节一下了吸附问题，一般加入一定量的三乙胺会得到很好的改善！

我以前做过开管柱，采用的是溶胶凝胶的方法，遇到的问题是柱子不通，采取的方法是以水热法加热，然后用氮气吹。这样效果要比直接加热柱子的效果要好一些，直接加热有时会使毛细管外的聚酰亚胺涂层脱落，柱子易断。

我做的是蛋白与药物小分子的亲和作用研究。开始刚进第一针蛋白就出了一个很漂亮的单峰，很高兴。后来发现蛋白是溶在百分之五十的甘油中的，进一针甘油发现两个峰出峰时间竟然一致，PDA上的信息也一样，才发现尽然是甘油峰。后来几经周折才除去甘油跑出了蛋白峰。
这个方法文献上没有报道，因为常规的蛋白基本都有固体样品买。也提示我在以后的实验当中一定要注意细节，大家共勉！

我是做硅胶基质毛细管整体柱的，采用sol-gel技术，主要是采用日本Tanaka课题组的方法，在前体TMOS中掺杂小比例的同MTMS，可避免柱干裂提高制柱成功率。另外运行CEC时个人使用的是纯电泳模式，一开始平衡时，尽量调低电压，等基线平稳后，再缓慢增加电压，因容易产生焦耳热导致基线陡动。