littlehai 2009/11/11
好多问题..我来帮着楼上回答..从后往前吧 质谱进行蛋白测序有两种,一种是酶切的,一种不酶切的 不酶切的也分两种,一种是基于MALDI的,利用ISD将蛋白从N端和C端碎裂,分别对N端和C端测序,如蛋白小于80残基,可基本完成测序;另一种是基于高分辨ESI质谱,利用CID+ECD/ETD将蛋白质完全解析,然后对其进行序列分析。 酶切的方法也不少,基本思路就是利用双酶切或多酶切,对各个肽段分别MS/MS解析,最后再拼在一起。 ESI在分析小分子(分子量小于1000时)通常会以单价态离子存在,不过也要看分子性质,如果分子容易结合质子(如含多个氨基),就很容易形成多价态离子。即使分子不含氨基等基团,如果其质量较大,体积过大,也会形成多价态。 电离条件、溶液酸碱性等因素也会影响价态分布,不过这些只是影响其分布,如果要想排除多价态,比较靠谱的方法还是修饰,改变分子性质。 钠离子为啥干扰峰型呢?这主要是针对低分辨质谱而言的。对于低分辨质谱,无法分辨蛋白质[M+H]+峰和[M+Na]+峰,两者重叠在一起会导致峰变形,干扰其分子量测定。 那为啥换成NH4+就不干扰了呢?因为很多时候Na+比H+更容易与分子结合,而H+比NH4+容易结合,所以在NH4+盐条件下,仍会形成[M+H]+而非[M+NH4]+,而且如果真的形成了[M+NH4]+,也很不稳定,很容易脱氨而形成[M+H]+。
ldjzcx
第1楼2009/11/09
1.DNA由于含有大量磷酸根,很容易结合溶剂或样品中微量的钠离子,使其峰形很差.可以加入少量铵离子交换树脂去除钠离子.
2.蛋白质在MALDI源中主要产生单电荷峰和少量多电荷峰,谱图简单,分子量很直观;ESI源则产生一系列多电荷峰,需去卷积算出分子量.
3.一般是要先酶解成肽段,再用串联质谱对肽段逐个测序.但也可以对蛋白质直接进行测序,方法有:(1) MALDI-ISD-TOF,(2)ESI-ETD-FT MS,都是使蛋白质在质谱内裂解再测量其碎片,从而测定其序列.
littlehai
第3楼2009/11/11
好多问题..我来帮着楼上回答..从后往前吧
质谱进行蛋白测序有两种,一种是酶切的,一种不酶切的
不酶切的也分两种,一种是基于MALDI的,利用ISD将蛋白从N端和C端碎裂,分别对N端和C端测序,如蛋白小于80残基,可基本完成测序;另一种是基于高分辨ESI质谱,利用CID+ECD/ETD将蛋白质完全解析,然后对其进行序列分析。
酶切的方法也不少,基本思路就是利用双酶切或多酶切,对各个肽段分别MS/MS解析,最后再拼在一起。
ESI在分析小分子(分子量小于1000时)通常会以单价态离子存在,不过也要看分子性质,如果分子容易结合质子(如含多个氨基),就很容易形成多价态离子。即使分子不含氨基等基团,如果其质量较大,体积过大,也会形成多价态。
电离条件、溶液酸碱性等因素也会影响价态分布,不过这些只是影响其分布,如果要想排除多价态,比较靠谱的方法还是修饰,改变分子性质。
钠离子为啥干扰峰型呢?这主要是针对低分辨质谱而言的。对于低分辨质谱,无法分辨蛋白质[M+H]+峰和[M+Na]+峰,两者重叠在一起会导致峰变形,干扰其分子量测定。
那为啥换成NH4+就不干扰了呢?因为很多时候Na+比H+更容易与分子结合,而H+比NH4+容易结合,所以在NH4+盐条件下,仍会形成[M+H]+而非[M+NH4]+,而且如果真的形成了[M+NH4]+,也很不稳定,很容易脱氨而形成[M+H]+。