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几丁质固定化猪胰脂肪酶(PPL)的研究

生物制药

  • 固定化酶的性质受酶自身性质和载体材料共同影响。这两者之间的相互作用决定了固定化酶的物理化学和动力学特性。因此,载体材料的选择在整个酶的固定化过程举足轻重。尽管大家都意识到载体的重要性,但是迄今为止,仍然没有一种载体材料是通用的。想成为酶的通用性载体材料,必须拥有一系列的优秀特性:对蛋白质具有高的亲和力,和酶分子有直接可进行反应的功能团,可以进行化学修饰,具有亲水性,化学稳定性,一定的机械强度,比较容易形成不同的几何结构以提供相应的渗透性,其表面对于生物转移合适等等。毋庸置疑的,在药学,医学,食品业以及农业应用中,载体材料还须是无毒的,并且具有生物相容性。考虑到对公共健康和环境的友好性,载体材料还应该可以生物降解,更经济。

    综合考虑到现在已经被人们用来做固定化的载体材料,包括无机材料和有机材料,天然的和人工合成的,几丁质是众多材料中性质非常优良的载体材料。

    几丁质是天然的聚多糖,几丁质是世界上数量最多的一类可再生有机资源。几丁质是甲壳类动物的壳以及昆虫的外骨骼的主要成分,在生物圈中,每年都有大量的几丁质被合成和降解。

    几丁质(chitin)N-乙酰氨基葡萄糖以β-1,4糖苷键所连接而成的直链多糖,在许多溶剂中都是不溶解的。几丁质的结构与植物纤维素的结构非常相似,只是2号位碳原子上的羟基被乙酰氨基和氨基所取代,因此又称作动物纤维素。值得一提的是,几丁质不是简单的化学物质,在最初以及制造的过程中可呈现出多样化的结构。



    实验部分

    实验试剂和仪器

    实验试剂:

    猪胰脂肪酶Lipase from porcine pancreasType Ⅱsigma);

    牛血清蛋白(BSA,成都飞克生物试剂有限公司,分析纯);

    考马斯亮蓝G-250(沃宏化学品有限公司)

    聚乙二醇1500PEG1500,成都市科龙化工试剂厂,分析纯);

    几丁质(sigma);

    25%戊二醛成都市科龙化工试剂厂

    三丁酸甘油酯;

    考马斯亮蓝G-250(国产);

    分析天平(万分之一级,Sartorius BS 124 S)。

    其他无机盐试剂均为分析纯。

    实验仪器:

    紫外分光光度计(Hitachi,U-1900);

    恒温振荡器(上海智城科学仪器有限公司 ZHWY-2102-C);

    低温冷冻离心机(日立CF15RX);

    涡旋混合仪(国产);

    pH计(雷磁科学仪器有限公司)

    双水相纯化PPL

    将猪胰脂肪酶400毫克溶解于10毫升1M pH=7.0的磷酸钠缓冲溶液中,4℃搅拌溶解4h,在低温离心机中以8000rpm离心10min,使未溶解的杂质沉淀除去,并且低温可以防止酶失活。

    10ml的离心管中,以磷酸氢二钾溶液含量为13%PEG1500溶液含量为17%3gPPL粗酶液,用pH=7.0的缓冲溶液定量到10g,做成双水相,轻轻来回倒,使整个体系混合均匀。混匀后在低温离心机中30000rpm离心10min,分离纯化PPL。可看到整个体系分为上下两相,上层为PEG层,下层为盐水层。PPL被萃取到PEG层。

    离心后,将双水相放在冰箱上层4℃静置过夜。这一过程有利于无机盐分子,酶分子以及杂蛋白在双水相中的分离,使得到的PEG层中的PPL更为纯净。

    几丁质载体固定PPL方法研究

    几丁质不溶于弱酸和纯水中,可溶于一下强酸,如浓盐酸,浓硫酸,浓磷酸等。为得到几丁质小球,就需要先把几丁质溶解。

    几丁质小球的制备

    称取不同重量的几丁质粉末,溶解于不同浓度的浓盐酸中,70℃水浴搅拌,至几丁质溶解,待溶液冷却后,用注射器将几丁质溶液逐滴加入4mol/LNaOH-30%甲醇溶液中[17],几丁质不溶于碱性溶液和甲醇中,所以很快就析出白色几丁质小球。随着几丁质浓度的改变,几丁质小球的透明度也会随之发生变化。几丁质浓度越小,小球的透明度就越高。

    小球做成后,立即倒掉碱溶液,并用大量的纯水冲洗小球,直到洗液呈中性。将洗好的小球浸泡在纯水中,于冰箱上层保存。



    几丁质小球的活化

    称取1g几丁质小球(湿重),用4mL2%质量浓度的戊二醛,0.02mol/LpH=8.0的磷酸钾缓冲溶液,在25℃下,于恒温摇床中以200rpm的转速活化4h



    将活化好的几丁质小球用大量的纯水进行冲洗,直至没有戊二醛残留。洗好后,将小球浸泡在纯水中,置于冰箱上层保存。



    PPL的固定化

    称取1g活化的几丁质小球(湿重)于10mL的烧瓶中,加入2mL通过双水相纯化过的PEG层的PPL,于摇床中4℃,200rpm进行固定化。



    PPL固定化一定时间后,取出小球,用适量pH=7.0的磷酸钠缓冲溶液洗去其表面残留的蛋白质,测试洗液的蛋白含量,以及固定化PPL的酶活。



    蛋白质含量的测试(Bradford



    (1)制备牛血清蛋白(BSA)标准液(100μg/mL

    精确称取0.0010g牛血清蛋白,用纯水溶解后定容至10mL。再取1mL1mg/mLBSA溶液用纯水定容至10mL,即得到100μg/mLBSA标准溶液。



    (2)配制考马斯亮蓝溶液

    显色液称取考马斯亮蓝G-250 100mg,溶于50ml95%乙醇后,加入85%磷酸100mL,再用蒸馏水稀释至1000mL。试剂的终浓度为0.01%考马斯亮蓝G-2504.7(W/V)乙醇,和8.5(W/V)磷酸。该染色液可保存数月,若不加水可长期保存,用前稀释。



    (3)标准曲线的制作

    准确量取0.1mL,0.2mL,0.4mL,0.6mL,0.8mL100μg/mLBSA标准溶液于试管中,用纯水稀释成1mL。以1mL纯水为空白,加入5mL考马斯亮蓝溶液染色3-4分钟。用紫外分光光度计检测595nm处的紫外吸收。





    A=595nm处的吸光度为x,以标准值蛋白质含量为y,得到蛋白质含量的标准曲线,y=0.1698x-0.0087,R2=0.9952

    实验考察了不同几丁质浓度,不同盐酸浓度,不同氢氧化钠浓度对几丁质小球成球的影响,以及制作出的小球经过不同戊二醛浓度活化以后固定PPL的能力。

    结果如下表所示:

    几丁质含量

    盐酸

    NaOH-甲醇

    成球情况

    戊二醛含量

    8%

    12N

    4M

    2%

    8%

    6N

    4M

    ---

    5%

    12N

    4M

    2%

    5%

    10N

    4M

    2%

    5%

    9N

    4M

    5%

    5%

    8N

    4M

    5%

    5%

    6N

    4M

    ---

    4%

    10N

    4M

    2%

    3%

    12N

    6M

    ---



    通过实验和上表可知,几丁质制作小球最低浓度为4%,最低氢氧化钠浓度为4mol/L,最低盐酸浓度为8mol/L。几丁质溶液中几丁质百分比越高,小球的透明度就越低,几丁质百分比越小,小球的透明度就越好。透明度小,那么小球的孔径应该较大一些,结构更有利于酶分子的进入。

    将几丁质小球通过不同浓度的戊二醛进行活化以后,用来固定PPL。结果发现,它们都能不同程度的固定一定的酶量,但是都不能使三丁酸甘油脂发生水解,测不出酶活。推测原因有两种,一是几丁质小球上固定的酶量太少,起到的催化效果非常微弱,测不出酶活;二是由于几丁质溶液是强酸性的,盐酸浓度非常高,在将几丁质溶液滴入氢氧化钠-甲醇溶液中成球时,起内部的盐酸并没有被完全中和掉,做固定化时,酶分子可能因接触到强酸环境而使其失活。

    小结

    通过几丁质小球利用戊二醛交联对纯化过的猪胰脂肪酶进行固定化,结果发现,几丁质作为载体材料来固定酶具有很多优越性,其资源丰富,对酶分子无毒性,并且容易进行化学改性。但是此次结果中未测出酶活,我们也分析了具体原因,准备换一种材料固定PPL,进一步的实验还在努力当中,希望能得到理想的实验结果
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  • 兰博周

    第1楼2014/10/13

    想换换壳聚糖来重新固定化,条件又得重新摸索了,路漫漫啊

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  • 9999youran

    第2楼2014/10/14

    好文章,学习了

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  • 御风飘逝

    第3楼2014/10/14

    做的越多,收获越大啊。

    兰博周(v2913831) 发表:想换换壳聚糖来重新固定化,条件又得重新摸索了,路漫漫啊

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  • 兰博周

    第4楼2014/10/14

    没做成功,现在还在用壳聚糖做呢

    v2889188:好文章,学习了

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  • 兰博周

    第5楼2014/10/14

    [div]yuanrui82:做的越多,收获越大啊。[/div]

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  • 青林

    第6楼2014/11/04

    原创写的不错,生物活性的研究不好做!

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  • 御风飘逝

    第7楼2014/11/30

    现在基础研究不好做。一般做的都很浅。

    青林(wyqql2060) 发表:原创写的不错,生物活性的研究不好做!

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