珍稀动植物

AC-21全自动植物根系分析仪植物根系分析仪是研究植物根系和根际系统的关键设备，可以研究根、菌根和根际微生物、动物间的交互作用。现有的植物根系分析仪所提供的图像分辨率有限，不仅妨碍了对于根际形态结构的详细分析（例如根毛长度、菌根菌丝生长），而且限制了通过视觉对根系进行分析时的准确度。此外，自动化程度不高也限制了对植物根系的深入研究。主要表现如下：1.需要周期性的获取图像，且无法远程操作，极大的增加了工作量；2.人工操作导致无法连续成像，无法获取根的实际动态；3.成像过程中，相机由于手动移动引起的图片模糊针对以上的问题，VSI公司开始研发最新的AC-21全自动植物根系分析仪，这套系统的研发始于欧盟基金资助的NextMR-IAA项目，目前已取得重要成果。全自动植物根系分析仪现有功能：无需操作人员，自动重复获取根部及根际图片；超高清RGB相机，固定焦距（动态分辨率在0.05-0.003125之间），支持定时拍摄及高清视频录制；可更换的照明装置，强度在0-256级可控；360°成像，角度分辨率在0.36-0.0225°之间；可通过参数编程修改图像之间的距离（纵向）和角度（旋转）；微根管最长2米，直径7厘米，内径6.4厘米，支持垂直或一定角度安装；图片失真自动校正，自动裁剪；操作控制中心和电机一起安装在顶部，密封防水；通过12V或24V直流供电，也可以用太阳能电池、缓冲电池或者交直流转换器供电；系统特点：软件自动控制——可按照预定程序进行全自动连续观测根系图像自动分析——根系动态追踪和图像自动分析软件后期可扩展功能：实现远程连接，远程操作以及数据传输；更高的分辨率；结合红外相机，允许分析新的参数：水分、C含量等；减小操作单元的尺寸；根管的最大长度延长至3-5m。产地与厂家：奥地利 VSI

自动植物水势仪器介绍：IN-ZSC植物水分状况测定仪，是用于测定植物水分状况和它的组成成分及压去木质部位导管汁液提供成分分析用的一种分析仪器。可以利用此仪器研究植物的水分关系和植物与环境的关系。植物水势仪适用于植物生理学、生态学、农学、林学及牧草等的研究。据此指导作物及林草的合理用水和抗旱育种等工作，是从事农林教学和科研工作的重要仪器.该仪器操作简便，检测快速，同时适用于室内和室外及野外测量。自动植物水势仪器测量原理：植物在土壤——植物 —— 大气的连续系统中，植物的根茎不断从土壤中吸收水分，而叶片又不断地向周围环境蒸发散失掉水分，在这种水势的梯度系统中，植物的根 —— 茎 —— 叶之间也一定存在着水势梯度关系，使木质导管中的细小水柱受空气低水势的负压影响，形成水分向上运输的拉力。当植物枝条或叶片被切下时，导管中这种被拉紧的水柱断裂，水柱会从切口处向上端内部收缩。将切下的材料装入仪器的压力室内(操作程序见下章节)，使切口的一端伸出室外密封起来，然后加压，使枝条或叶片内的张力重新平衡，把小水柱推回恰好到切口表面为止，此时水滴检测探头自动检测水滴的渗出，自动锁存测量数据。仪器显示的压力值就是当前植物的水势值。自动植物水势仪功能特点：1、大屏幕液晶显示，全中文菜单操作。2、测量方式：自动测量、手动测量一键式切换。3、MPa与Bar两种测量单位可供选择。4、液晶屏显示的压力值就是当前植物的水势值。5、强大的存储功能，可存储4000条记录。6、一键式删除所有测量数据。7、可以通过USB线上传电脑，上位机软件自动分析测量数据。8、测量数据可以报表的形式查看，并可以选择时段查询查看。9、可将存储记录的数据以EXCEL格式备份保存，方便以后调用。自动植物水势仪技术参数：检测范围：0-3.5Mpa显示方式：液晶屏显示 读取精度：0.01Mpa仪器外型及尺寸：箱一：560mm×400mm×280mm 箱二：630mm×400mm×310mm电源：12v/2.5Ah锂电池，具有时钟功能。 仪器净重：每个箱子重量：15Kg左右12v/2.5Ah锂电池,具有时钟功能。存储容量4000条记录。自动植物水势仪可以通过USB线上传电脑，上位机软件自动分析测量数据

多功能全自动植物呼吸测量系统 新陈代谢（metabolism）是生命的最基本特征，其中植物进行着光合作用和呼吸作用两个相对独立又相互影响的过程：前者吸收CO2并利用太阳能合成有机化合物同时放出氧气，后者则消耗氧气排出CO2。光合作用发生于植物的绿色组织特别是叶片，且主要在白天进行，而植物的呼吸作用发生于植物的根、茎、叶、种子、果实等所有组织，而且每时每刻都在进行中。植物呼吸测量系统由CO2分析仪、氧气分析仪、水汽分析仪、气体抽样单元、数据采集分析系统等组成，可以测量植物的根、茎、叶、果实、种子及全株植物的呼吸或净呼吸与净光合，用于植物生理生态研究、根系呼吸研究、种子储存与生活力检测、蔬菜果实储存研究等。 功能特点：ü 高精确度、高稳定性、高分辨率、系统兼容性和扩展性强ü 可选配实验室模块式测量系统，或选配野外便携式测量系统ü 可自由组合封闭式测量、开放式测量（全自动高通量、实时测量，连接于各类不同大小体积呼吸室）、或利用抽样流动注射技术测量分析，其中流动注射技术相比气相色谱仅仅10多秒可完成样品分析ü 配置灵活多样，可根据经费预算情况及研究目的选配不同的配置组合，简单配置可以由CO2分析仪、呼吸室及数据采集显示器组成，复杂配置包括CO2分析仪、氧气分析仪、水汽分析仪、精密气体抽样单元、气路转换器（多通道系统）、数据采集器及分析软件等 ü 系统可用于动物呼吸测量、土壤呼吸测量及光合作用测量（需根据具体研究目的选配相应配件）ü 系统可选配FluorCam叶绿素荧光监测技术、Specim高光谱成像技术以及Thermal-RGB植物热成像技术等用于植物各种样品健康状况监测 技术参数：1. 氧气分析测量（FC–10）：氧气测量范围：0–100％；分辨率：0.0001%；精确度：优于0.1％；响应时间：小于7秒；24小时漂移：低于0.01％；20分钟噪音：低于0.002％pk–pk；温度、压力补偿，4通道模拟输出，16bit分辨率；数码过滤（噪音）0–50秒可调，增幅0.2秒，内置A/D转换器分辨率24 bits；可同时测量温度（测量范围0–60℃，分辨率0.001℃）和气压（测量范围30–110kPa，分辨率0.0001kPa）；具两行文字数字LCD显示屏，具背光，可同时显示氧气含量和气压；大小33×25×10cm，重量约4.5kg2. 高精度差分氧气分析仪（备选），适于微小植物样品或昆虫的呼吸代谢测量，测量范围0–100%，精度0.1%，分辨率0.0001%3. 二氧化碳分析测量（CA–10）：双波长非色散红外技术，测量范围0–5％或0–15％两级选择（双程），内置数据采集系统，实时测量，响应时间小于1秒，分辨率优于0.0001%或1ppm（可达0.1ppm），精确度1%，建议气流5–2000ml/分钟，噪音小于2ppm，24小时漂移低于0.002%，通过软件温度补偿，采样频率10Hz；具两行文字数字LCD显示屏，具背光，可同时显示CO2含量和气压；4通道模拟输出，16bit分辨率，具数码过滤（噪音）；大小33×25×10cm，重量约4.5kg4. 超高精度二氧化碳分析测量（备选）：差分非色散红外气体分析仪，用于测量微小生物（如果蝇等）或蜱螨类微小动物的呼吸代谢，测量范围0–3000ppm，分辨率达0.01ppm，精确度1%5. RH–300水气测量仪（备选）：测量范围0.2％–100％（相对湿度）、分辨率0.001%（相对湿度），露点温度-40–40℃、分辨率0.002℃（露点温度），水汽密度0–10μg/ml、分辨率0.0001μg/ml，水汽压力0–20kPa、分辨率0.01Pa；模拟输出16 bits，建议气流速度5–2000ml/min，具两行文字数字LCD显示屏，具背光，可同时显示水汽含量和温度6. SS4气体二次抽样单元：包括一个泵、针阀（控制进出泵体的气流）和气流计（0–2000ml/m）；隔膜泵，滚轴马达，最大流速2–4L/min；热桥式气流计，分辨率1ml/min，精确度2%；模拟输出12 bits；重量约2kg。另外可根据测试样品规模定制质量气流发生与控制器7. 气路转换器：8通道（包括一个Baseline通道），采样频率10Hz，具备数字模式、手动模式、程序式等模式，可以扩展至16、24、32通道等8. UI–3数据采集器，12通道，8个模拟输入，16bit分辨率；4个温度输入，分辨率0.001摄氏度；8个数字输出用于系统控制，1个16bit计数器，2通道电压输出，脉冲宽度调制9. 呼吸室：有硼硅玻璃材质微型呼吸室（直径9.0mm，体积0.5–1.0ml）、小型呼吸室（不同直径供选配）及中大型呼吸室（用于整株植物或果实等）等供选配10. 专业技术配置与培训，包括封闭式、开放式、抽气式、推气式、抽样流动注射法等不同技术装配与操作技术培训 产地：美国客户案例 1 下图：美国康奈尔大学园艺学系利用植物呼吸测量系统研究储藏温度与湿度变化对花毛茛干燥块状根呼吸和存活的影响，结果表明，在5℃时，湿度变化对样品呼吸速率影响不大，而在25℃时，湿度显著影响其呼吸作用（HortScience，2011） 客户案例 2 英国的克兰菲尔德大学Cranfield University使用该多功能全自动植物呼吸测量系统连续发表了10篇以上高质量专业SCI论文，研究实验样品涉及茶树茶叶、蓝莓、草莓、洋葱、土豆、鳄梨、蟠桃马铃薯块茎等等，部分应用可参考“新鲜农产品呼吸速率原位实时测量技术及其在采后研究中的应用”快讯。详情请来电咨询010-82611572。 Fig 1 320升呼吸室与多功能全自动植物呼吸测量系统连接 产地：美国 部分参考文献 Anastasiadi M , Collings E R , Shivembe A , et al. Seasonal and temporal changes during storage affect quality attributes of green asparagus[J]. Postharvest Biology and Technology, 2020, 159:111017-. Anastasiadi M , N Falagán, Rossi S , et al. A comprehensive study of factors affecting postharvest disorder development in celery[J]. Postharvest Biology and Technology, 172. Collings ER, Alamar MC, Bogaerts Marquez M, et al., (2021) Improving the tea withering process using ethylene or UV-C. Journal of Agricultural and Food Chemistry, Volume 69, Issue 45, 17 November 2021, pp. 13596-13607 Dimkovikj, A., Van Hoewyk, D. Selenite activates the alternative oxidase pathway and alters primary metabolism in Brassica napus roots: evidence of a mitochondrial stress response. BMC Plant Biol 14, 259 (2014). García-Pastor ME, Falagán N, Giné-Bordonaba J, Wójcik DA, Terry LA & Alamar MC (2021) Cultivar and tissue-specific changes of abscisic acid, its catabolites and individual sugars during postharvest handling of flat peaches (Prunus persica cv. platycarpa), Postharvest Biology and Technology, 181 (November) Article No. 111688. Natalia Falagán, Tiana Miclo and Leon A. Terry. Graduated Controlled Atmosphere: A Novel Approach to Increase “Duke” Blueberry Storage Life. Frontiers in Plant Science. 2020,11:221. Ohanenye, I.C. Alamar, M.C. Thompson, A.J Terry, L.A. Fructans redistribution prior to sprouting in stored onion bulbs is a potential marker for dormancy break. Postharvest Biology and Technology 2019, 149 , 221-234. Rady A , Ekramirad N , Adedeji A A , et al. Hyperspectral Imaging for Detection of Codling Moth Infestation in GoldRush Apples[J]. Postharvest Biology and Technology, 2017, 129:37-44.