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色谱条件选定

液相色谱(LC)

  • 测果汁中的有机酸,苹果酸,柠檬酸,莽草酸,奎宁酸,请问合适的条件和方法是什么?比如说用什么样的柱子?用液相还是离子色谱?流动相是什么等。谢谢大家!
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  • tangtang

    第1楼2012/05/10

    百度:

    固相萃取_反相高效液相色谱法同时测定浓缩果汁中的11种有机酸

    http://wenku.baidu.com/view/7b403033a32d7375a4178062.html

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  • 有水有渝

    第2楼2012/05/11

    应助达人

    反相高效液相色谱法测定果汁中11 种有机酸条件的优化

    摘 要 提出了一种利用高效液相色谱同时分析果汁中11 种有机酸的优化的方法。在Prontosil 120-10-C18H(10μm ,4. 6 mm i. d. ×250 mm) 色谱柱上,3 % CH3OH20. 01 mol/L K2HPO4 (pH 2. 55) 溶液做流动相,流速为0. 5mL/ min ,柱温为30 ℃,紫外检测波长为210 nm时,可以较好地分离和测定果汁中常见的11 种有机酸。该方法相对标准偏差0. 31 %~1. 59 % ,回收率96. 8 %~102. 0 % ,各种酸的线性相关系数r > 0. 9996 ,具有较高的准确度和精确度,方法简便,可应用于果汁中有机酸的检测。
    有机酸是果汁酸味的主要成分,其种类和含量高低与果汁的品质和风味有极密切的关系[1 ,2] 。原果汁营养丰富,但由于生产成本较高,果汁的掺假行为经常发生,对天然果汁的真伪鉴定是当今国内外检验的一个热点[3] 。不同种类的天然果汁中,有机酸的种类和含量差别很大。在一定条件下,可以通过测定各种有机酸的含量来鉴别果汁饮料掺假与否[4] 。因此,果汁中多种有机酸的分析测定具有重要的意义。
    反相高效液相色谱法是近几年来发展较快的方法,然而现有的报道仅限于6~7 种有机酸的分离[2 ,5~7 ] 。本研究通过优化反相C18柱的色谱条件,可同时分离测定果汁中的11 种有机酸,便捷、快速、准确。

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  • 省部重点实验室

    第3楼2012/05/11

    优化类人胶原蛋白II基因工程菌的培养基组成及流加操作
    可以下载一下
    里面的第三章 讲的是检测条件摸索


    反相色谱法与本实验液相系统 
    一般用非极性固定相(如C18、C8);流动相为水或缓冲液,常加入甲醇、乙腈、异丙醇、丙酮、四氢呋喃等与水互溶的有机溶剂以调节保留时间。适用于分离非极性和极性较弱的化合物。反相色谱在现代液相色谱中应用最为广泛,据统计,它占整个HPLC应用的80%左右。
    随着柱填料的快速发展,反相色谱法的应用范围逐渐扩大,现已应用于某些无机样品或易解离样品的分析。为控制样品在分析过程的解离,常用缓冲液控制流动相的pH值。但值得注意的是,C18和C8使用的pH值通常为2.5~7.5(2~8),太高的pH值会使硅胶溶解,太低的pH值会使键合的烷基脱落。有报告新商品柱可在pH 1.5~10范围操作。
    HPLC系统一般由输液泵、进样器、色谱柱、检测器、数据记录及处理装置等组成。其中输液泵、色谱柱、检测器是关键部件。
    本实验所用高效液相色谱仪为SHIMADZU LC-2010C HT,反相色谱柱Shim-pack C18 VP-ODS (250 mm × 4.6 mm, 5 μm),紫外检测器。

    3.2 液相检测条件摸索

    3.2.1 波长选择



    3.1 发酵中有机酸全波段扫描图

    Figure 3.1 Full spectrum scan of organic acid



    分别配制甲酸、乙酸、琥珀酸、柠檬酸等几种有机酸标准溶液,在UV2100紫外可见分光光度仪进行扫描,结果这几种有机酸的最大吸收波长在210220 nm围内,本研究选择UV210 nm进行实验。

    3.2.2 流动相及浓度

    考察几种常用流动相如:(NH4H2PO4-H3PO4(NH42HPO4-H3PO4、磷酸水溶液、硫酸水溶液、KH2PO4-H3PO4流动相。综合考察本实验,拟选择KH2PO4-H3PO4流动相,流动相浓度选为0.03mol/L,其原因是流动相浓度过高容易堵塞管路,而缓冲盐浓度过低,缓冲能力弱,流动相变化大,基线很难稳定。

    3.2.3 pH

    流动相的选择依据,流动相的pH值的主要取决于被分离的有机酸的pKa值,乙酸的解离常数是4.76,柱子能承受的最低pH值是2,在酸性流动相环境中,如果允许乙酸有1%的离子状态存在,则可预测流动相的pH值。

    pH = pKa + Log [Ac-]/[HAc] = 4.76 + Log 1% = 2.76 3.1

    由式3.1可知,流动相的pH值应该是pH 2~2.76之间。配制pH=2.22.42.62.8四种梯度流动相,最后选择pH=2.2的流动相。pH值越小,酸的解离越少,峰形越好。反相C18柱的容许pH范围2.08.0,而且磷酸盐在2.1处缓冲容量最大(由于篇幅所限,液相条件探索的色谱图省略处理)。

    3.2.4 温度

    有机酸在水溶液中存在离解平衡,温度升高时会增加溶质的离解,保留时间减少,但不利于有机酸的分离,当温度超过25˚C时各有机酸分离效果较差。因此,本实验选择柱温25˚C

    3.2.5 乙腈添加量(有机改性剂)

    在流动相中加入少量乙腈 ,能有效的改善峰形。以0.03mol/ L K2HPO4 pH 2.2)溶液作流动相,对不同的甲乙腈含量(01 %2 %3 %5 %10%)对色谱分离的影响进行了比较,结果表明:乙腈添加量少,峰拖尾严重;乙腈添加量多,峰分离度下降,峰重叠。随着流动相中乙腈含量的增加,有机酸的疏水端基与固定相的相互作用减弱,保留时间下降,2%的乙腈缓冲溶液(V/V)分离度和峰形较好。

    3.2.6 流速

    实验对流动相流速分别为0.8mL/min0.9mL/min1.0mL/min1.1mL/min1.2mL/min 时的实验结果进行了比较,结果表明流速为 0.9mL/min
    时效果较好。流速过大,酸的分离度减小,影响其检测结果;流速过小,分析时间延长,且琥珀酸的峰形不好,成馒头峰,也影响测定结果。
    3.3 液相检测

    3.3.1 流动相的配制

    1)溶液A:用磷酸盐缓冲液(H3PO4+KH2PO4)将超纯水调节pH2.2

    2)流动相:乙腈:溶液A=2%98%

    3)将配好的流动相置于溶剂过滤器中过滤,然后在超声波清洗器下进行超气。

    3.3.2 样品预处理

    1)取1ml发酵液10,000r/min离心5min

    2)取上清0.5ml,加入0.3gNaCL, 0.10ml 2.3mol/L H2SO4, 2.50ml乙醚,在振荡器上混合1min5,000r/min 离心3min

    3)取乙醚相1.00ml,0.20ml0.1mol/LNaOH混合1min5,000r/min离心3min,吸去上层乙醚,用试纸测试pH>9(在酸性条件下,用乙醚萃取,将有机酸以分子形式萃取到乙醚相中,再在pH>9的条件下反萃取到水相中,可大大去除其他物质的干扰),开盖挥发乙醚相后,置干燥器内干燥;

    4)加入2.5ml 0.02mol/LKH2PO4 pH2.2)溶解,10,000r/min离心10min

    5)取1.5ml0.45µm膜过滤注入样品瓶,取10μl进样分析。

    3.3.3 保留时间的确定

    选取发酵液中可能产生的有机酸如甲酸,琥珀酸,乙酸,柠檬酸,酒石酸,各取2%标准溶液进样分析,测定各有机酸的保留时间(图3.2)分别为:甲酸3.735minL-苹果酸 4.266 min,乳酸5.239min,乙酸5.739 min,柠檬酸7.805 min,琥珀酸9.502 min,丙酸13.871min

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  • flyaway

    第4楼2012/05/21

    都是强极性的酸性化合物,有些公司的AQ柱亲水柱可以试试看吧

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