【分享】NY 609-2002 <有机物料腐熟剂>

8　检验规则
8.1　检验分类
8.1.1　出厂检验（交收检验）
产品出厂时，须由生产厂的质量检验部门，按表5.1进行检验，检验合格并签发质量合格证的产品，方可出厂。出厂检验时不检有效期。
8.1.2　型式检验（例行检验）
一般情况下，一个季度进行一次。有下列情况之一者，必须进行型式检验。
a. 新产品鉴定；
b. 产品的工艺、材料等有较大更改与变化；
c. 出厂检验结果与上次型式检验有较大差异时；
d. 国家质量监督机构进行抽查或登记检验。
8.2　判定规则
8.2.1　具下列任何一条款者，均为合格产品
a)检验结果全部技术指标都符合标准要求的产品；

b)产品有效活菌数符合技术指标，而在产品的外观、pH值、水分、大肠菌群值、蛔虫卵死亡率等项非关键指标检测项目中，有2项（含）以下不符合技术指标。
8.2.2　具下列任何一条款者，均不合格产品
a)产品中有效活菌数不符合技术指标；
b)产品的外观、pH值、水分、大肠菌群值、蛔虫卵死亡率等项非关键指标检测项目中，有3项（含）以上不符合技术指标
c)固体产品中重金属指标任一项超标者。
　
9　包装、标10　识、运输与贮存
有机物料腐熟剂的包装、标识、运输和贮存按NY411中9.1、9.2、9.3和9.4执行。
附　录　A
（规范性附录）
酶活的测定
附　录　A
（规范性附录）
酶活的测定
A. 维素酶活的测定
A.1 试剂和溶液
a) 底物溶液：准确称取0.625g羧甲基纤维素钠盐，溶于100.0mL磷酸钠缓冲液（0.2 M, pH 6.0）,加热搅拌使之溶解。
b) DNS显色剂：称取10.0g 3,5-二硝基水杨酸溶于蒸馏水中，加入20.0g 氢氧化钠、200.0g
酒石酸钾钠和500.0mL水，加热溶解后再加入重蒸酚2.0g、无水亚硫酸钠0.5g待全部溶解后冷却，定溶至1000.0mL。
A.2 仪器设备
a) 分光光度计
b) 电子天平
c) 振荡器
d) 培养箱
A.3 标准曲线绘制
a) 标准葡萄糖溶液：用蒸馏水溶解25.0mg葡萄糖定溶至25.0mL。
b) 标准曲线绘制：
取5支带有20.0mL刻度的试管，按下表量取试剂：
试管号标准葡萄糖溶液（mL）磷酸钠缓冲液(0.2M pH 6.0)（mL）试管中葡萄糖量（μg）
105.00
20.44.6400
30.74.2800
41.63.41600
53.21.83200

每管中各加1.0mL 2.0 M氢氧化钠溶液和2.0mL DNS显色液，摇匀后置于沸水浴中准确加热5.0
min后，流水冷却，蒸馏水定溶至20.0mL，摇匀后于490nm处测定各管的OD值，以葡萄糖的μg数为横坐标，OD值为纵坐标，绘制标准曲线。
A.4 原样酶液
称取5.0g样品用蒸馏水稀释10倍，充分振荡，静止30min，过滤，其滤液即为原样酶液。
A.5 测定步骤
取3支带有20.0mL刻度的试管，1支作为空白对照，其余2支作为平行样品管。样品管中加1.0mL原样酶液，然后3支试管中分别加入4.0mL已预热至60℃的底物溶液，在60℃的水浴锅中反应20min取出，每管立即加入1.0mL
2.0M氢氧化钠溶液和2.0mLDNS显色液，摇匀后在对照管中再加入1.0mL原样酶液。将3支试管放入沸水浴中，显色5min后立即取出，流水冷却，定溶至20.0mL，用分光光度计于490nm处测其OD值。
A.6 纤维素酶活力计算
根据标准曲线换算成葡萄糖μg数，
　
U = （M1-M0）/ 20
式中：
U：样品的酶活力（μg/min）
M0：对照葡萄糖量（μg）
M1：分解后样品重量（μg）
20：酶与底物反应时间（min）
1mL原样酶液，每分钟产生1μg葡萄糖定义为1个酶活力单位（u）。
B. 蛋白酶活的测定
B.1 试剂
应符合QB/T 1803中的规定。
B.2 原样酶液的制备
称取样品10.0g（或10.0mL），加入装有玻璃珠的三角瓶（150mL）中，再加入一定体积的磷酸缓冲液（pH7.5）溶解，200转/min摇床振荡30min，然后四层纱布过滤，滤液再于3000转/min离心20min。离心后的上清液根据酶活力用缓冲液（pH7.5）稀释至适当浓度，供测试用。
B.3 应符合QB/T 1803的规定
只是在具体测定中有两处改变：一是反应时间（加入酪素后）由10min改为30min；二是原静止过滤改为离心5min过滤。
C. α-淀粉酶活测定
C.1 试剂
应符合QB/T 1803中的规定。
C.2 原样酶液的制备
称取样品10.0g（或10.0mL），加入装有玻璃珠的三角瓶（150mL）中，再加入一定体积的磷酸缓冲液溶解，200转/min摇床振荡30min，然后四层纱布过滤，滤液再于3000转/min离心20min。离心后的上清液根据酶活力用缓冲液稀释至适当浓度，供测试用。
C.3 标准曲线的绘制
a）可溶性淀粉标准溶液，按下表配置。

管号标准溶液的浓度（mg/mL）0.1%标准溶液的体积（mL）水的体积（mL）

b）分别取上述溶液各1.0mL（须做平行试验），加入到5mL稀碘液中，摇匀，于660nm测定吸光度,以不含可溶性淀粉的0管为空白对照。以吸光度为纵坐标，可溶性淀粉的浓度为横坐标，绘制标准曲线（此线应通过零点）。
根据作图或用回归方程，计算出吸光度为1时可溶性淀粉的量（mg），即为吸光常数K值，其值应在0.95~1.00范围内。
C.4 参照QB/T 1803-1993的方法进行测定。
在具体测定中以下三个方面略有变动：一是吸取2%可溶性淀粉溶液20.0mL改为1%可溶性淀粉溶液10.0mL；二是原磷酸盐缓冲液由10.0mL改为5.0mL；三是反应时间由5min变为30min。
C.5 计算
X= ( 4.76-A×K ) ×21×n/30
试中：
X：样品的酶活力，u/g(mL)；
4.76：1mL反应液中最初含有的可溶性淀粉的量（mg）；
A：样品平行试验的平均吸光度；
K：吸光常数；
21：反应液的总体积，mL；
n ：稀释倍数；
30：反应时间，30min。
1g（mL）样品，于60℃、pH=6.0条件下，1分钟液化1mg可溶性淀粉，即为1个酶活力单位，以u/g(mL)表示。