酶活力的测定方法
（1）葡萄糖标准曲线的绘制
取8只洗净烘干的20 mL具塞刻度试管，编号后分别吸取0.0 mL ~ 1.4 mL葡萄糖标液用蒸馏水定容至2 mL，配置成一系列不同浓度的葡萄糖溶液。充分摇匀后，向各试管中加入1.5 mLDNS溶液，摇匀后沸水浴5 min，取出冷却后用蒸馏水定容至20 mL，充分混匀。在540 nm波长下，以1号试管溶液作为空白对照，调零点，测定其它各管溶液的吸光度值并记录结果。以葡萄糖含量为横坐标，以对应的吸光度值为纵坐标，绘制出葡萄糖标准曲线。
（2）滤纸酶活力的测定
取4支洗净烘干的20 mL具塞刻度试管，编号后各加入0.5 mL酶液和1.5 mL 0.05 mol/L pH 4.5的柠檬酸缓冲液，向1号试管中加入1.5 mL DNS溶液以钝化酶活性，作为空白对照，比色时调零用。将4支试管同时在50℃水浴中预热5 min ~ 10 min，再各加入滤纸条50 mg（定量滤纸，约1 cm × 6 cm），50℃水浴中保温1 h后取出立即向2、3、4号试管中各加入1.5 mL DNS溶液以终止酶反应，充分摇匀后沸水浴5 min，取出冷却后用蒸馏水定容至20 mL，充分混匀。以1号试管溶液为空白对照调零点，在540 nm波长下测定2、3、4号试管液的吸光度值并记录结果。
根据3个重复吸光度的平均值，在标准曲线上查出对应的葡萄糖含量，按下式计算出滤纸酶活力（U/g）。在上述条件下，每小时由底物生成1 μmol葡萄糖所需的酶量定义为一个酶活力单位（U）。
式中：U—滤纸酶活力（U/g）； M—葡萄糖含量（mg）；
V1—酶液定容总体积（mL）； K—5.56为1 mg葡萄糖的μmol数；
V2—反应液中酶液加入量（mL）； m—样品重（g）；
T—时间（h）。
酶活力的测定结果
（1）葡萄糖标准曲线的绘制
采用分光光度计法，以葡萄糖在其最大吸收波长540 nm处绘制标准曲线，如图所示。
求得葡萄糖的回归方程为：
Y=0.7895X-0.0084 R2=0.9994
葡萄糖含量在0.00 mg ~ 1.40 mg范围内呈线性关系。
（2）酶活力的测定（滤纸法）
根据上式计算，滤纸法酶活力为5000 U/g，与酶制剂公司所提供酶活相一致。
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