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【求助】-请教做农残的高手

  • liuchenglan
    2004/05/20
  • 私聊

农残检测

  • 请教做农残方面的高手,不知谁有测蔬菜中多菌灵的好方法,,能否能我学学?
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  • 第1楼2004/05/25

    提取
    称取样品10g,加入100ml烧杯中,再加入50ml丙酮,在振荡器上震荡30分钟。减压抽滤,滤液转入250ml分液漏斗中,将所得残渣(包括滤纸)重新转入原来的100ml烧杯中,再加入50ml丙酮 ,在振荡器上震荡30分钟。二次减压抽滤,合并2次所得的滤液,移入分液漏斗中,加入饱和氯化钠溶液30ml,摇匀后加入2MHCl 2 ml,然后用40 ml CH2Cl2萃取脱色,弃去CH2Cl2相,水相用2ml/L的NaOH调PH至7.6-7.8,再用CH2Cl2 萃取3 次(30、20、20 ml)。
    净化
    在层析柱内,依次加入少许助滤剂,1g硅胶,2g无水硫酸钠,先用5ml的CH2Cl2洗柱子,再分次加入萃取液,最后用5ml CH2Cl2洗萃取液,所得滤液在30℃下减压蒸干,用甲醇定容至10ml,供液谱测定。
    样品的测定
    高效液相色谱条件
    色谱柱:C18 柱,250mm×4.6mm; 柱温室温;
    流动相:甲醇:醋酸氨:氨水(V/V)=65:30:5;
    流速:1 ml/min;
    检测波长:283nm;
    进样量:20 μl;

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  • 第3楼2004/07/14

    国标上有,你自己可以去查查看!

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  • 第4楼2008/06/08

    SN 0220-1993 出口水果中多菌灵残留量检验方法
    GB/T 5009.188-2003 蔬菜、水果中甲基托布津、多菌灵的测定
    SN/T 1753-2006 进出口浓缩果汁中噻菌灵、多菌灵残留量检测方法 高效液相色谱
    NY/T 1453-2007 蔬菜及水果中多菌灵等16种农药残留测定液相色谱-质谱-质谱联用法

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  • 第5楼2008/06/09

    QuEChERS法提取,LCMSMS检测,检出限在0.01ug/kg以下

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  • 第6楼2008/06/10

    应助达人

    好像多菌灵和甲基硫菌灵可以相互转化,所以要两种农药一齐测才比较准确。

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  • 第7楼2008/06/11

    还有一种 反相离子对LC法。乙腈高速分散提取,硫酸镁脱水盐析,经凝结沉淀净化,LC.

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  • 第8楼2008/06/12

    出口水果中多菌灵残留量检验方法
    1 主题内容与适用范围
    本标准规定了出口水果中多菌灵残留量检验的抽样、制样和液相色谱测定方法。
    本标准适用于出口柑桔中多菌灵残留量的检验。

    2 抽样和制样

    2.1 检验批
    以不超过1 500件为一检验批。
    同一检验批的商品应具有相同的特征,如包装、标记、产地、规格和等级等。
    2.2 抽样数量
    批量,件 最低抽样数,件
    1~25 1
    26~100 5
    101~250 10
    251~1 500 15
    2.3 抽样方法

    按2.2规定的抽样件数随机抽取,逐件开启。每件至少取500g作为原始样品,原始样品总量不得少于2kg。加封后,标明标记,及时送实验室。
    2.4 试样制备
    将所取原始样品缩分出1kg,取可食部分,经组织捣碎机捣碎,均分成两份,装入洁净容器内,作为试样。密封,并标明标记。
    2.5 试样保存
    将试样于-18℃以下冷冻保存。
    注:在抽样和制样的操作过程中,必须防止样品受到污染或发生残留物含量的变化。
    3 测定方法
    3.1 方法提要
    试样用盐酸溶液加热回流,进行提取。提取液经过滤后调至碱性,再用二氯甲烷提取。
    提取液经浓缩,C18预处理小柱净化,甲醇洗脱。洗脱液浓缩后用液相色谱仪-紫外检测器测定,外标法定量。
    3.2 试剂和材料
    所用试剂除注明外,均为分析纯,水为蒸馏水。
    3.2.1 正己烷:优级纯。
    3.2.2 二氯甲烷。
    3.2.3 甲醇:色谱纯。
    3.2.4 甲醇溶液:20%(V/V)水溶液。
    3.2.5 盐酸溶液:2mol/L。
    3.2.6 氢氧化钠溶液:10mol/L,2mol/L。
    3.2.7 碳酸氢钠溶液:用水溶解5g碳酸氢钠并稀释至100mL。
    3.2.8 多菌灵标准品:纯度≥96%。
    3.2.9
    多菌灵标准溶液:准确称取适量的多菌灵标准品,先用少量的盐酸溶液(3.2.5)微热溶解,再用该盐酸溶液定容,配成浓度为1.00mg/mL的标准储备溶液。根据需要再配成适当浓度的标准工作溶液。
    3.3 仪器和设备
    3.3.1 液相色谱仪并配有紫外检测器。
    3.3.2 离心管:具塞,5mL,15mL,50mL。
    3.3.3 离心机:转速6 000r/min。
    3.3.4 快速混匀器。
    3.3.5 高速组织捣碎机。
    3.3.6 多功能微量化学样品处理仪(或相当的装置)。
    3.3.7 微量注射器:25μL、100μL。
    3.3.8 玻璃抽滤器。
    3.3.9 砂芯漏斗:2号或3号。
    3.3.10 C18预处理小柱:先用3mL甲醇,再用同体积水分别淋洗。
    3.3.11 注射器:5mL。
    3.4 测定步骤
    3.4.1 提取、净化

    称取试样约5g(精确到0.1g)于50mL离心管(3.3.2)内,加10mL盐酸溶液(3.2.5),装上回流冷凝管后,加热至沸腾,回流30min。移出,冷却至室温。将离心管内的样液用砂芯漏斗抽滤,再用10mL盐酸溶液(3.2.5)分数次洗涤残渣。合并滤液,在容量瓶中用盐酸溶液(3.2.5)定容至25mL。

    准确吸取2.5mL上述滤液,同时吸取与样液中多菌灵浓度相近的标准工作溶液2.5mL,分别置于15mL离心管中,加4mL二氯甲烷,在快速混匀器上混匀2min,离心(4000r/min)3min。用尖嘴吸管吸出下层二氯甲烷,弃去。在水相中加入适量氢氧化钠溶液(10mol/L),使试液接近碱性,然后小心滴加氢氧化钠溶液(2mol/L),使试液的pH为10~11。再滴加碳酸氢钠溶液,使试液的pH调至9.5~10。用3×4 mL二氯甲烷在快速混匀器中提取2min,离心(4 000r/min)3min,用尖嘴吸管将二氯甲烷转入另一离心管中。合并三次二氯甲烷提取液,浓缩至1mL。
    将上述浓缩的提取液通过注射器转入C18预处理小柱(3.3.10)。用3mL甲醇溶液(3.2.4)洗涤离心管并过C18预处理小柱,弃去流出液。继用3mL正己烷洗涤离心管并过C18预处理小柱,弃去流出液。用2×2.5mL甲醇(3.2.3)洗涤离心管并过C18预处理小柱,收集二次洗脱液并浓缩至1mL以下。用甲醇(3.2.3)定容至1mL,供液相色谱测定。
    3.4.2 测定
    3.4.2.1 色谱条件
    a. 色谱柱:μBondapak C18,300mm×29mm(id);
    b. 流动相:甲醇-水(4+6);
    c. 流速:0.8mL/min;
    d. 检测器:紫外检测器,测定波长286nm;
    e. 色谱柱温度:室温。
    3.4.2.2 色谱测定
    根据样液中多菌灵含量情况,选定与样液峰高相近的标准工作溶液。标准工作溶液和样液中多菌灵响应值均在仪器检测线性范围内。对标准工作溶液和样液等体积参插进样测定。在上述色谱条件下,多菌灵保留时间约为7min。
    3.4.3 空白试验
    除不加试样外,按上述测定步骤进行。
    3.5 结果计算和表述
    用色谱数据处理机或按下式计算试样中多菌灵残留含量:
    h•cs
    X=───-
    hs•c
    式中:X—试样中多菌灵残留量,mg/kg;
    h—样液中多菌灵的峰高,mm;
    hs—标准工作溶液中多菌灵的峰高,mm;
    cs—标准工作溶液中多菌灵的浓度,μg/mL;
    c—最终样液所代表的试样浓度,g/mL。
    注:计算结果需扣除空白值。
    4 测定低限、回收率
    4.1 测定低限
    本方法的测定低限为0.7mg/kg。
    4.2 回收率
    回收率的实验数据:多菌灵添加浓度在0.7~12.0mg/kg范围内,回收率为90.9%~102.2%

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