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【金秋计划】玄参内生真菌Nigrospora oryzae D7次生代谢产物研究
小卡
2024/09/10
私聊
中药/天然药检测
内生真菌几乎无处不在地存在于植物体内的各种组织中,是多种生物活性化合物的重要储存宝库
[1]
。
植物内生真菌作为一个巨大的资源库,与宿主共同进化,不仅能产生与宿主植物相似或相同的活性物质,还可以从中发现大量骨架新颖具有药用价值的次生代谢产物,是天然活性先导化合物的重要源泉之一
[2-5]
。
黑孢属
Nigrospora
菌株
广泛分布于自然界,虽然是常见的植物病原菌
[6]
,但也是重要的药用动植物内生菌,能够产生多种次级代谢产物,主要有聚酮、蒽醌、萜、甾体和生物碱等,而且大部分化合物具有明显的抗菌、抗氧化、细胞毒、抗病毒和抗肿瘤等药理作用
[7-8]
。有作为先导药物和环保的农用化学品的潜力,在农业植物保护和人类疾病治疗领域均显示出较大的应用前景。
内生真菌
Nigrospora oryzae
D7
为首次从玄参
Scrophularia ningpoensis
Hemsl.
根中分离得到。本实验将对玄参内生真菌
N. oryzae
进行次生代谢产物的研究,期望发掘结构新颖的活性先导化合物。最终分离得到
11
个化合物,分别鉴定
4,5,8-
三羟基
-6-
甲氧基
-2-
甲基
-3-2-
丙酰
-3,4-
二氢萘
-1(2
H
)-
酮
[4,5, 8-trihydroxy-6-methoxy-2-methyl-3-(2-oxopropyl)-3,4-dihydronaphthalen-1(2
H
)-one
,
1
]
、
(
S
)-2-
甲基
-2,3-
二氢苯并呋喃
-4-
羧酸
[(
S
)-2-methyl-2,3-dihydro- benzofuran-4-carboxylic acid
,
2
]
、
3-
羟基
-2-
甲氧基
- 5,6-
二甲基苯甲酸(
3-hydroxy-2-methoxy-5,6- dimethylbenzoic acid
,
3
)、
2-
乙氧基
-3-
羟基
-5,6-
二甲基苯甲酸(
2-ethoxy-3-hydroxy-5,6-dimethylbenzoic acid
,
4
)、
2,4-
二羟基
-3,6-
二甲基苯甲醛(
2,4- dihydroxy-3,6-dimethyl benzaldehyde
,
5
)、
2,5-
二甲基间苯二酚(
2,5-dimethyl resorcinol
,
6
)、
2-(4-
羟苯基
)
乙酸乙酯
[2-(4-hydroxyphenyl) ethyl acetate
,
7
]
、酪醇(
tyrosol
,
8
)、
α-acetylorcinol
(
9
)、
(20
S
,22
E
,24
R
)-5α,8α-
桥二氧
-
麦角甾烷
-6,22-
二烯
- 3β-
醇
[5α,8α-epidioxy-(20
S
,22
E
,24
R
)-ergosta-6,22- dien-3β-ol
,
10
]
、
(3β,5α,6β,22
E
)-
麦角甾
-7,22-
二烯
- 3,5,6-
三醇
[(3β,5α,6β,22
E
)-ergosta-7,22-diene-3,5,6- triol
,
11
]
、其中化合物
1
为新的萘醌类化合物,命名为稻黑孢醌
A
;活性测试结果表明化合物
1
对人肺癌细胞
A549
和人乳腺癌细胞
MDA-MB-435
细胞株具有较强的生长抑制活性,半数抑制浓度(
median inhibition concentration
,
IC
50
)分别为(
9.25
±
1.60
)、(
11.37
±
2.10
)
μmol/L
;化合物
10
和
11
对
A549
细胞的增殖有一定的抑制活性,
IC
50
分别为(
25.23
±
2.50
)、(
27.48
±
1.90
)
μmol/L
。
1
仪器与材料
1.1
仪器与试剂
Agilent 1260
型高效
液相色谱仪
(美国
Agilent
公司);
Bruker Avance III 500 MHz
型核磁共振波谱仪(德国布鲁克公司);
MJ-150-I
型霉菌培养箱(上海精密仪器仪表有限公司);
BSD-YX
(
F
)
3400
立式摇床(上海博讯医疗生物仪器股份有限公司);
RE-52C
旋转蒸发仪(上海沪西分析仪器厂有限公司);
YXQ-LS-75SⅡ
立式压力蒸汽灭菌器(上海博讯);
Nicolet IS50
型光谱仪(美国赛默飞世尔科技有限公司);
JASCO J-810
型圆二色光谱仪(日本分光株式会社);岛津
LC-MS
8050
型质谱仪(日本岛津株式会社);
CYTATION
型多功能酶标仪(美国
BioTek
公司)。
柱色谱硅胶(
200
~
300
、
400
~
500
目);反相柱(
YMC Pack ODS-A
(
250 mm
×
10 mm
,
5 μm
),日本
YMC
公司);
TLC
(
HSGF
254
硅胶预制板,烟台黄务硅胶开发实验厂)。二氯甲烷、石油醚、乙醇、甲醇、醋酸乙酯等(分析纯,中国医药集团上海化学试剂公司),甲醇(高效
液相色谱
级,中国医药集团上海化学试剂公司);阿霉素(批号
S17092
,上海源叶生物科技有限公司)。
PDA
培养基(马铃薯
200 g
、葡萄糖
20 g
、琼脂
20 g
、水
1 000 mL
)。
PDB
培养液(马铃薯
200 g
、葡萄糖
20 g
、水
1 000 mL
);二甲基亚砜(
DMSO
,上海生工生物工程有限公司);
CCK-8
试剂盒(上海酶联生物科技有限公司);
DMEM
培养基
和特级胎牛血清(
FBS
,美国
Gibco
公司)。
1.2
菌株来源
本研究所用菌株分离自新鲜玄参根(
2017
年
11
月采自浙江磐安大盘镇),植物经浙江中医药大学秦路平教授鉴定为玄参
S. ningpoensis
Hemsl.
,菌株经上海生工生物工程有限公司鉴定为
Nigrospora oryzae
(
Genbank
序列号
MH782625
)。样本储存于浙江中医药大学药学院。
1.3
细胞株
A549
细胞和
MDA-MB-435
细胞购自中国科学院上海细胞库。
2
方法
2.1
菌株发酵
将内生真菌
D7
接入
250 mL
锥形瓶中(含
100 mL PDB
培养基),
26
℃
,
180 r/min
旋转摇床培养
7 d
后,转接入
5 L
锥形瓶(含
3 L
的
PDB
培养基),培养
10
瓶,静置于恒温培养箱中,于
28
℃
,培养
10 d
,得到
30 L
左右的发酵液。
2.2
次生代谢产物的提取与分离
将内生真菌
N. oryzae
D7
的发酵物用甲醇浸提
3
次,粗提液用醋酸乙酯萃取后得到醋酸乙酯部位浸膏约
14.5 g
,将该浸膏经硅胶柱色谱,石油醚
-
醋酸乙酯系统(
40
∶
1
、
30
∶
1
、
20
∶
1
、
10
∶
1
、
8
∶
1
、
5
∶
1
、
3
∶
1
、
1
∶
1
、
1
∶
2
)梯度洗脱,经
TLC
检测合并分成
10
个组分(
Fr. A1
~
A10
)。对
A1-1
组分进行硅胶柱色谱、
HPLC
纯化(甲醇
-
水
62
∶
38
,
1 mL/min
),得到化合物
1
(
t
R
=
35.1 min
,
2.4 mg
);对
A2-1
组分进行硅胶柱色谱、
HPLC
纯化(甲醇
-
水
58
∶
42
,
1 mL/min
),得到化合物
9
(
t
R
=
19.0 min
,
2.2 mg
)、
10
(
t
R
=
24.1 min
,
2.9 mg
)、
11
(
t
R
=
32.4 min
,
2.4 mg
)、
12
(
t
R
=
45.3 min
,
2.7 mg
);对
A2-3
组分进行硅胶柱色谱、
HPLC
纯化(甲醇
-
水
70
∶
30
,
1 mL/min
),得到化合物
2
(
t
R
=
40.0 min
,
3.1 mg
)、
3
(
t
R
=
34.3 min
,
2.1 mg
)、
4
(
t
R
=
38.3 min
,
2.3 mg
)、
5
(
t
R
=
45.3 min
,
2.6 mg
)。
将
A4-3-1
组分进行
凝胶柱
色谱、反相硅胶柱色谱、
HPLC
纯化(甲醇
-
水
52
∶
48
,
1 mL/min
),得到化合物
6
(
t
R
=
32.5 min
,
2.7 mg
)、
7
(
t
R
=
22.5 min
,
2.4 mg
)、
8
(
t
R
=
46.2 min
,
2.4 mg
);对
A7-1
组分进行硅胶柱色谱、
HPLC
纯化(甲醇
-
水
56
∶
44
,
1 mL/min
),得到
化合物
13
(
t
R
=
21.0 min
,
3.2 mg
)、
14
(
t
R
=
25.1 min
,
3.4 mg
)、
15
(
t
R
=
32.6 min
,
3.4 mg
)。
3
结果
3.1
结构鉴定
化合物
1
:黄色粉末,溶于甲醇,丙酮。
10%
硫酸乙醇显色剂显棕色。
HR-ESI-MS
给出准分子离子峰
m
/
z
293.102 5 [M
-
H]
?
,结合
1
H-NMR
、
13
C-NMR
,知其分子式为
C
15
H
18
O
6
;
1
H-NMR
谱中可观察到
1
个双峰甲基
1.16 (3H, d,
J
= 7.0 Hz)
、
1
个单峰甲基
2.08 (3H, s)
以及
1
个甲氧基
3.92 (3H, s)
,在低场有
1
个单峰苯环质子信号
6.47 (1H, s)
。在碳谱中显示共有
15
个碳信号,其中
1
个为连氧碳信号
55.3
(
CH
3
)、
1
个甲氧基碳、
2
个羰基碳信号
208.3
(
C
),
204.5
(
C
),
1
个甲基碳信号
10.7
(
CH
3
)。在高场有
5
个碳,低场有
6
个双键或苯环碳,结合以上信号可以推测化合物
1
为
1
个萘醌类化合物,且结构与已知化合物
fusarnaphthoquinone A
[9]
极为相似,但该结构有
1
个明显的甲基质子信号
1.16 (3H, d)
。
在二维谱
1
H-
1
H COSY
中观察到
H-7
和
H-12
,
H-6
和
H-7
相关信号,确定了
H-5/H-6/H-7/H-12
的连接顺序(图
1
)。
HMBC
谱显示,
H-2
与
C-1
、
C-3
、
C-4
和
C-4a
相关,甲氧基
CH
3
-13
与
C-3
相关,说明苯环的存在以及甲氧基在取代在苯环
3
位;
H-5
与
C-4a
相关,
CH
3
-12
与
C-8
、
C-7
、
C-11
相关,证明了母核右侧还原醌环的存在,以及位于
7
位的甲基
CH
3
-12
取代;另外,
H-5
、
H-7
和
CH
3
-12
都与
C-9
相关,
CH
3
-11
与
C-9
和
C-10
相关,又结合其碳谱和氢谱数据,确定
9
位有甲酰基取代。至此,该化合物的平面结构得以确定,鉴定为
4,5,8- trihydroxy-6-methoxy-2-methyl-3-(2-oxopropyl)-3,4- dihydronaphthalen-1(2
H
)-one
,为
1
个新化合物,命名为稻黑孢醌
A
。该化合物的
1
H-NMR
和
13
C-NMR
数据归属见表
1
。
化合物
2
:透明无定型粉末;
HR-ESI-MS
m
/
z
: 179.070 4 [M
+
H]
+
,推测其分子式为
C
10
H
10
O
3
;
1
H- NMR (600 MHz, CDCl
3
)
δ
: 11.03 (1H, s, -COOH), 7.41 (1H, td,
J
= 7.9, 2.4 Hz, H-6), 6.89 (1H, dd,
J
=8.4, 2.5 Hz, H-7), 4.73 (1H, dq,
J
= 6.8, 4.4 Hz, H-2), 2.93 (2H, d,
J
= 6.6 Hz, H-3), 1.53 (3H, dd,
J
= 6.4, 2.4 Hz, 2-Me)
;
13
C-NMR (150 MHz, CDCl
3
)
δ
: 170.1 (COOH), 162.3 (C-7a), 139.5 (C-4), 136.3 (C-6), 118.0 (C-7), 116.4 (C-5), 108.4 (C-3a), 34.8 (C-3), 20.9 (2-Me)
。与参考文献对比
[10]
,数据一致,鉴定化合物
2
为
(
S
)-2-
甲基
-2,3-
二氢苯并呋喃
-4-
羧酸。
化合物
3
:透明无定型粉末;
HR-ESI-MS
m
/
z
: 197.081 0 [M
+
H]
+
,推测其分子式为
C
10
H
12
O
4
;
1
H- NMR (600 MHz, MeOD)
δ
: 6.22 (1H, s, H-4), 3.89 (3H, s, 2-OCH
3
), 2.42 (3H, s, 5-CH
3
), 2.00 (s, 3H, 6-CH
3
)
;
13
C-NMR (150 MHz, MeOD)
δ
: 174.0 (COOH), 164.2 (C-1), 161.5 (C-2), 140.9 (C-3), 111.5 (C-4), 109.9 (C-6), 105.0 (C-5), 52.0 (OCH
3
), 24.3 (5-CH
3
), 8.0 (6-CH
3
)
。与参考文献对比
[11]
,数据一致,鉴定化合物
3
为
3-
羟基
-2-
甲氧基
-5,6-
二甲基苯甲酸。
化合物
4
:透明无定型粉末;
HR-ESI-MS
m
/
z
: 211.097 1 [M
+
H]
+
,推测其分子式为
C
11
H
14
O
4
;
1
H- NMR (600 MHz, MeOD)
δ
: 6.21 (1H, s, H-4), 4.38 (2H, qd,
J
= 7.1, 1.4 Hz, 2-OCH
2
CH
3
), 2.45 (3H, s, 5-CH
3
), 2.00 (3H, s, 6-CH
3
), 1.40 (3H, td,
J
= 7.1, 1.3 Hz, 2-OCH
2
CH
3
)
;
13
C-NMR (150 MHz, MeOD)
δ
: 173.6 (COOH), 164.3 (C-1), 161.5 (C-2), 140.9 (C-3), 111.6 (C-4), 109.9 (C-6), 105.1 (C-5), 62.1 (2-OCH
2
CH
3
), 24.5 (5-CH
3
), 14.6 (2-OCH
2
CH
3
), 7.9 (6-CH
3
)
。以上数据与文献报道一致
[11]
,故鉴定化合物
4
为
2-
乙氧基
-3-
羟基
-5,6-
二甲基苯甲酸。
化合物
5
:透明无定型粉末;
HR-ESI-MS
m
/
z
: 167.070 9 [M
+
H]
+
,推测其分子式为
C
9
H
10
O
3
;
1
H- NMR (600 MHz, MeOD)
δ
: 10.03 (1H, s, H-7), 6.22 (1H, s, H-5), 2.47 (3H, s, H-9), 1.98 (3H, s, H-8)
;
13
C- NMR (150 MHz, MeOD)
δ
: 194.4 (C-7), 165.2(C-4), 165.1 (C-2), 142.9 (C-1), 113.7 (C-6), 110.9 (C-3), 110.1 (C-5), 18.0 (C-9), 7.1 (C-8)
。与参考文献对比
[12]
,
数据一致,鉴定化合物
5
为
2,4-
二羟基
-3,6-
二甲基苯甲醛。
化合物
6
:透明无定型粉末;
HR-ESI-MS
m
/
z
: 139.076 1 [M
+
H]
+
,推测其分子式为
C
8
H
10
O
2
;
1
H- NMR (600 MHz, MeOD)
δ
: 6.14 (2H, s, H-3, 5), 2.13 (3H, s, H-8), 1.99 (3H, s, H-7)
;
13
C-NMR (150 MHz, MeOD)
δ
: 157.0 (C-1, 3), 136.9 (C-5), 109.0 (C-2), 108.3 (C-4, 6), 21.3 (C-8), 8.2 (C-7)
。与参考文献对比
[12]
,
数据一致,鉴定化合物
6
为
2,5-
二甲基间苯二酚。
化合物
7
:透明无定型粉末;
HR-ESI-MS
m
/
z
: 181.086 3 [M
+
H]
+
,推测其分子式为
C
10
H
12
O
3
;
1
H- NMR (600 MHz, MeOD)
δ
: 7.04 (2H, d,
J
= 8.5 Hz, H-4, 8), 6.71 (2H, d,
J
= 8.5 Hz, H-5, 7), 4.19 (2H, t,
J
= 7.1 Hz, H-1), 2.82 (1H, t,
J
= 7.1 Hz, H-2), 2.00 (3H, s, CH
3
)
;
13
C-NMR (150 MHz, MeOD)
δ
: 172.9 (COOCH
2
), 157.1 (C-6), 130.9 (C-4, 8), 130.0 (C-3), 116.2 (C-5, 7), 66.6 (C-1), 35.2 (C-2), 20.8 (CH
3
)
。与参考文献对比
[13]
,数据一致,鉴定化合物
7
为
2-(4-
羟苯基
)
乙酸乙酯。
化合物
8
:透明无定型粉末;
HR-ESI-MS
m
/
z
: 139.076 0 [M
+
H]
+
,推测其分子式为
C
8
H
10
O
2
;
1
H- NMR (600 MHz, MeOD)
δ
: 7.03 (2H, d,
J
= 8.5 Hz, H-4, 8), 6.71 (2H, d,
J
= 8.5 Hz, H-5, 7), 3.68 (2H, t,
J
= 7.2 Hz, H-1), 2.71 (2H, t,
J
= 7.2 Hz, H-2)
;
13
C-NMR (150 MHz, MeOD)
δ
: 156.7 (C-6), 130.9 (C-3, 4, 8), 116.1 (C-5, 7), 64.6 (C-1), 39.4 (C-2)
。以上数据与文献报道一致
[14]
,鉴定化合物
8
为酪醇
。
化合物
9
:透明无定型粉末;
HR-ESI-MS
m
/
z
: 154.086 1 [M
+
H]
+
,推测其分子式为
C
8
H
11
NO
2
;
1
H- NMR (600 MHz, MeOD)
δ
: 6.41
~
5.86 (3H, m, H-2, 4, 6), 3.54 (2H, s, H-7), 2.12 (3H, s, 9-CH
3
)
;
13
C-NMR (150 MHz, MeOD)
δ
: 209.5 (C-8), 159.9 (C-3, 5), 137.8 (C-1), 108.9 (C-2, 6), 102.3 (C-4), 51.7 (C-7), 28.9 (C-9)
。和参考文献一致
[15]
,鉴定化合物
9
为
α-acetylorcinol
。
化合物
10
:无色油状物;
HR-ESI-MS
m
/
z
: 443.352 1 [M
+
H]
+
,推测其分子式为
C
29
H
46
O
3
;
1
H-NMR (400 MHz, CDCl
3
)
δ
: 6.50 (1H, d,
J
= 8.5 Hz, H-6), 6.24 (1H, d,
J
= 8.4 Hz, H-7), 5.22 (1H, dd,
J
= 15.3 Hz, H-23), 5.17 (1H, m, H-22), 3.97 (1H, m, H-3), 0.99 (3H, d,
J
= 6.5 Hz, H-21), 0.91 (3H, d,
J
= 6.8 Hz, H-28), 0.88 (3H, s, H-19), 0.88 (3H, d,
J
= 6.9 Hz, H-26), 0.82 (3H, s, H-18), 0.81 (3H, m, H-27)
;
13
C-NMR (125 MHz, CDCl
3
)
δ
: 135.6 (C-6), 135.6 (C-22), 132.6 (C-23), 130.9 (C-7), 82.3 (C-5), 79.6 (C-8), 66.6 (C-3), 56.3 (C-17), 51.9 (C-14), 51.3 (C-9), 44.7 (C-13), 43.2 (C-24), 39.9 (C-20), 39.5 (C-12), 37.1 (C-4), 37.1 (C-10), 34.9 (C-1), 33.3 (C-25), 30.3 (C-2), 29.0 (C-16), 23.6 (C-11), 21.1 (C-21), 20.8 (C-15), 20.3 (C-26), 19.8 (C-27), 18.3 (C-19), 18.2 (C-28), 13.0 (C-18)
。与文献对照一致
[16]
,
确定化合物
10
为
5α,8α-epidioxy-(20
S
,22
E
,24
R
)- ergosta-6,22-dien-3β-ol
。
化合物
11
:无色固体;
HR-ESI-MS
m
/
z
: 431.352 3 [M
+
H]
+
,推测其分子式为
C
28
H
46
O
3
;
1
H-NMR (400 MHz, CDCl
3
)
δ
:
5.39 (1H, s, H-7), 5.18 (2H, m, H-22, 23), 4.09 (1H, m, H-3), 3.63 (1H, brs, H-6)
;
13
C-NMR (100 MHz, CDCl
3
)
δ
: 33.1 (t, C-1), 31.0 (t, C-2), 67.9 (d, C-3), 39.7 (t, C-4), 76.1 (s, C-5), 73.9 (d, C-6), 117.7 (d, C-7), 144.2 (s, C-8), 43.6 (d, C-9), 37.3 (s, C-10), 22.2 (t, C-11), 39.4 (t, C-12), 43.9 (s, C-13), 54.9 (d, C-14), 23.1 (t, C-15), 28.3 (t, C-16), 56.1 (d, C-17), 12.4 (q, C-18), 19.0 (q, C-19), 40.6 (d, C-20), 21.3 (q, C-21), 135.8 (d, C-22), 132.4 (d, C-23), 43.2 (d, C-24), 33.4 (d, C-25), 20.3 (q, C-26), 19.8 (q, C-27), 18.2 (q, C-28)
。与文献报道对照
[17]
,鉴定化合物
11
为
(3β,5α,6β,22
E
)-ergosta-7,22-diene-3,5,6- triol
。
3.2
肿瘤抑制活性测试
采用
CCK-8
法测定化合物对
MDA-MB-435
细胞和
A549
细胞的细胞毒性。首先,细胞在高糖
DMEM
(含有
10% FBS
+
0.5%
双抗)培养基中培养。培养
48 h
后,取对数生长期的细胞,用
0.25%
胰蛋白酶
-0.02%
EDTA
消化,取浓度在
4
×
10
4
~
5
×
10
4
个
/mL
的细胞接种到
96
孔板中,放置
37
℃、
5% CO
2
培养箱中过夜。
24 h
后将
11
个化合物,阳性对照阿霉素及空白对照加入
96
孔板中,设
5
个复孔,加药后放置于
37
℃、
5 % CO
2
的培养箱中培育
48 h
。吸去上清,每孔加入
90 μL
新鲜培养液和
CCK-8
(
10 μL
),同样条件下继续培养
4 h
后,用酶标仪在
450 nm
处读取
A
值,计算细胞生长抑制率。筛选出的抗肿瘤抑制率大于
50%
的内生真菌,设置
6
个浓度梯度(
3.125
、
6.25
、
12.5
、
25
、
50
、
100 μg/mL
),运用
Logit
法计算
IC
50
。
抑制率=
(
A
对照
—
A
给药
)/(
A
对照
—
A
空白
)
活性测试结果表明,化合物
1
对
A549
细胞和
MDA-MB-435
细胞具有较强的生长抑制活性,
IC
50
分别为(
9.25
±
1.60
)、(
11.37
±
2.10
)
μmol/L
;化合物
10
和
11
对
A549
细胞的增殖有一定的抑制活性,
IC
50
分别为(
25.23
±
2.50
)、(
27.48
±
1.90
)
μmol/L
。其余化合物对
A549
和
MDA-MB-435
细胞增殖的抑制活性较弱,在初筛
50 μmol/L
下,抑制率低于
50%
。
4
讨论
本实验综合利用多种色谱分离技术对药用植物玄参内生真菌
N. oryzae
D7
的次级代谢产物进行了化学研究,并运用谱学技术鉴定了化学结构,发现了
1
个新的萘醌类化合物,以及
10
个已知化合物。化合物
2
曾在松叶内生真菌的次生代谢产物中分离得到并有一定的抑菌效果
[10]
。化合物
3
和
4
曾在石斛属里分离得到
[11]
。化合物
6
是
1
个酚类化合物,该化合物曾在长松萝
Usnea diffracta
Vain
中分离得到
[12]
。化合物
7
曾在见血封喉内生真菌
Acremonium
sp. J1
次生代谢产物中分离得到
[13]
。玄参内生真菌是一个丰富的资源库,薄层色谱显示
N. oryzae
醋酸乙酯部位的成分比较多且容易分离,所以首先分析醋酸乙酯部分并再继续分离其余部分。
内生真菌
N. oryzae
的分离只是其中很小的一部分,还有大量内生真菌的代谢产物还有待于进一步研究利用。药用植物内生真菌因其极其丰富的多样性以及蕴含丰富新颖的次生代谢产物,能为天然药物研发等工作开辟新的途径,具有极为广阔的应用前景。
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玄参内生真菌作用大!
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